Молекулярно-генетическое исследование
Всем пациентам при включении в исследование было проведено молекулярно-генетическое тестирование на наличие полиморфизма трех позиций промоторного региона гена ФНО-а. Исследование, выполненное на базе генетической лаборатории ОАО «Медицина», включало три этапа:
-Выделение ДНК из клинического образца
-Амплификация специфических фрагментов ДНК
-Детекция продуктов амплифкации
Для ДНК диагностики точковых мутаций и полиморфизмов используется метод аллель специфичного лигирования с последующей амплификацией.
К основным преимуществам данного метода относятся его чувствительность, возможность работать с небольшим количеством исследуемого материала, специфичность и простота исполнения.В наборе предусмотрен один или несколько образцов ДНК для обязательного положительного контроля прохождения реакции. В случае отсутствия фрагментов амплификации в исследуемых образцах и наличия их в положительном контроле выделение ДНК из проб проводили заново.
* Выделение ДНК из цельной венозной крови ДНК выделяли по стандартной неэнзиматической методике с использованием коммерческого набора реагентов DiatomTM DNA Prep 100 (ООО «Центр молекулярной генетики», Россия) из лимфоцитов периферической крови, взятой из локтевой вены [173]. Выделенную ДНК замораживали и хранили при -20 °С. Изучение полиморфных вариантов исследуемых генов проводили с помощью амплификации соответствующих участков генома методом полимеразной цепной реакции (ПЦР), используя структуру праймеров и параметры температурных циклов, описанных в литературе.
Геномную ДНК выделяли из лимфоцитов периферической крови следующим образом. Однородный образец крови (50 мкл) помещали в пробирку «Эппендорф» с 1000 мкл деинизированной воды и инкубировали при комнатной температуре в течение 30 минут. Затем центрифугировали в течение 2 мин с ускорением 10 000g и ресуспендировали, оставляя осадок и около 30 мкл надосадочной жидкости.
К осадку добавляли до 200 мкл 5% раствора смолы Chelex-100 (BioRad) и в течение нескольких секундперемешивали на микроцентрифуге Vortex.
Полученный материал инкубировали при t=560C в течение 30 минут. Повторно перемешивали на микроцентрифуге Vortex и инкубировали при t=1000C в течение 8 минут. После инкубации производили интенсивное встряхивание на Vortex и центрифугировали 3 минуты с ускорением 10 000g. Для проведения ПЦР брали надосадочную жидкость.
* Амплификация.
Для амплификации ДНК-фрагмента длиной 148 нуклеотидных проб с вариабельным нуклеотидом в 308 положении промоторного региона использовали следующие праймеры: 5'-AGGCAATAGGTTTTGAGGGCCAT- 3' и 5'-TCCTCCCTGCTCCGATTCCG-3', синтезированные для исследования фирмой ЗАО "Синтол". Геномную ДНК (~ 100 нг) аплифицировали, используя 1,25 ед. Таg-полимеразы (Fermentas) в 25 мкл буфера, содержащего 75 мМ Трис-HCl (pH 8.8), 20 мЫ (NH4)2SO4, 0.01% Tween 20, 2,5 мЫ MgCl2, 2 мЫ каждого дезоксинуклеотидтрифосфата (dNTP) и 0,2 мкМ каждого праймера. ПЦР проводили на амплификаторе Hybaid PCR Express при следующих условиях амплификации:
Шаг 1. - 940С - 2 мин,
Шаг 2 - 940С - 20 сек,
Шаг 3 - 550С - 30 сек,
Шаг 4 - 720С - 35 сек.
Шаги 2,3 и 4 повторяли 30 раз.
Шаг 5 - 720С - 2 мин.
* Рестрикция.
Фрагмент амплификации (10 мл) подвергался рестрикции с использованием рестриктной эндонуклеазы NcoI (Fermentas): 10 мкл
амплификата инкубировалось при t=370C 4 часа в присутствии 5 ед. NcoI (рис. 1).
Фрагменты рестрикции анализировали методом горизонтального электрофореза в 7 % акриламидном геле (сток-раствор АА/БА 29:1).
Электрофоретическое разделение фрагментов проводили при напряженности поля 16 В/см в течение часа. В качестве контроля вместе с исследуемыми образцами наносили образцы, которые не подвергались ферментативной обработке.
Аллель ФНО- а 308 (G) давал 2 фрагмента длиной 128 и 20 нуклеотидных пар, аллель ФНО- а 308 (A) - один фрагмент - 148 н.п. Таким образом, гомозиготы по аллелю ФНО- а 308 (GG) давали два фрагмента, в то время как гомозиготы по аллелю ФНО- а 308 (AA) давали один фрагмент, а гетерозиготы (GA) - 3 фрагмента.
• Анализ полученных результатов Длина амплифицируемого фрагмента - 148 п.н.
После проведения рестрикции на геле регистрируются полосы (рис. 4):
в случае аллеля G - 128+20 п.н. в случае аллеля A - 148 п.н.
Электрофореграмма результатов амлификации с последующей рестрикцией:
1 2 3 4 5 6 7
148 п н 128 п.н.
Рис. 4. Образец до рестрикции
Маркер молекулярного веса ДНК фага X, рестрицированная PstI
генотип A/G
генотип A/G
генотип A/G
генотип G/G
генотип G/G
Контрольная ДНК - A/G
2.5.
Еще по теме Молекулярно-генетическое исследование:
- Молекулярно-генетическое исследование
- Молекулярно-генетические методы исследования
- Молекулярно-генетические методы исследования
- Молекулярно-генетические методы исследования - ПЦР- диагностика отделяемого влагалища, цервикального канала
- Глава 4: Исследование молекулярно-генетических маркеров в неизмененной слизистой культи желудка у больных, оперированных по поводу рака в объеме резекции.
- Молекулярно-генетические маркеры.
- Молекулярно генетические аспекты канцерогенеза при раке желудка
- ГЛАВА 1. Резекция желудка в хирургическом лечении рака и роль молекулярно-генетического исследования в прогнозе развития рецидива рака желудка.
- Глава 5. Молекулярный скрининг генетического риска.
- Молекулярно-генетические болезни.
- Молекулярно-генетические маркеры, изучаемые в работе
- 3.8 Молекулярно-генетические особенности возбудителей инвазивного кандидоза
- 2.2.2. Молекулярно – генетические методы анализа полиморфизма генов
- Молекулярно-генетические особенности РМЖ в молодом и пожилом возрасте.
- Молекулярно-генетическое изучение болезни Паркинсона в Республике Башкортостан
- Ассоциированные с возрастом молекулярно-генетические и клинико-патологические особенности злокачественных новообразований
- Выбор терапии у больных раком желудка на основе молекулярно-генетических маркеров
- Молекулярно-генетическая модель таупатии на основе сверхэкспрессии протеинкиназы GSK3p в нервной системе Drosophila melanogaster