2.2.2. Молекулярно – генетические методы анализа полиморфизма генов
Всего было изучено 9 полиморфных вариантов пяти генов – кандидатов подверженности туберкулезу. Исследовали 4 полиморфных варианта гена NRAMP1: 469+14G/C (INT4) – трансверсия гуанина на цитозин в 4 интроне, С274Т – консервативная замена в 3 экзоне, 1465-85 G/A – транзиция в 13 интроне и D543N – неконсервативная замена цитозина на аденин в 15 экзоне; два полиморфизма VDR гена: B/b, F/f; полиморфный вариант IL1B гена в 5 экзоне +3953А1/А2; VNTR полиморфизм гена IL1RN, расположенный во 2 интроне.
Также выборки генотипировали по полиморфизму гена IL12В, обусловленному трансверсией аденина на цитозин в 3`-UTR области (табл. 4) .Для генотипирования индивидов по указанным полиморфизмам использовали образцы тотальной ДНК, выделенной из цельной венозной крови по стандартной неэнзиматической методике [Маниатис Т. и др., 1984; Lahiri D. et al., 1992]. Выделенную ДНК замораживали и хранили при температуре -20° С до проведения эксперимента. Генотипирование осуществляли с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР), используя структуру праймеров и параметры температурных циклов, описанных в литературе (табл.5).
Смесь для ПЦР содержала 0,5-2,0 мкл специфической пары праймеров с концентрацией 1 о.е./мл, 1,2-1,8 мкл 10´ буфера для амплификации с концентрацией MgCl2 0,5-2,0 mM, 0,5-1,0 е. а. Taq ДНК-полимеразы («Сибэнзим», «Медиген», Новосибирск) и 100-200 нг геномной ДНК. Смесь помещали в 0,5 мл пробирки типа «Эппендорф», наслаивали сверху минеральное масло для предотвращения испарения и амплифицировали в автоматических минициклерах «MJ Rеsearch» (США) и «БИС 108» (Россия-Новосибирск).
Программа амплификации включала предварительную денатурацию при 94°С в течении 5 минут, с последующими 30-35 циклами отжига при температуре 60°С (1мин.), элонгации цепи при 72°С (40 сек.) и денатурации при 94°С (40 сек.). Программу завершала финальная элонгация при 72°С в течение 3 минут.
Амплификат подвергали гидролизу соответствующей рестриктазой (табл.5) при оптимальной для фермента температуре в течении 12-24 ч. Рестрикционная смесь включала 5-7 мкл амплификата, 1,0-1,2 мкл 10´ буфера для рестрикции, поставляемого фирмой – производителем («Сибэнзим», Новосибирск), и 1-5 единиц активности фермента (в зависимости от эффективности его работы). Продукты рестрикции фракционировали в 3% агарозном геле при напряжении 120 В в течении 30 минут. Фрагменты ДНК окрашивали бромистым этидием и визуализировали в ультрафиолетовом свете.Таблица 4
Структура материала популяционных выборок г. Томска и Томской области, изученных по полиморфным ДНК-маркерам генов
NRAMP1, VDR, IL1B, IL12B, IL1RN
| Ген | Полиморфизм | Выборка больных туберкулезом | Выборка здоровых индивидов |
| NRAMP1 | 469+14G/C | 279 | 137 |
| D543N | 278 | 139 | |
| 1465-85G/A | 279 | 135 | |
| 274C/T | 299 | 116 | |
| IL12B | 1188А/С | 279 | 129 |
| VDR | B/b | 293 | 108 |
| F/f | 298 | 113 | |
| IL1B | +3953A1/A2 | 301 | 139 |
| IL1RN | VNTR | 299 | 140 |
Таблица 5 Характеристики исследованных полиморфизмов
| Ген | Полимор-физм | Структура праймеров | tо отжига прай-меров, оС | Фермент рестрик-ции | Продукты гидролиза, п. н. | Литерату-ра | |
| Аллель «дикого» типа | Мутантный аллель | ||||||
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
NRAMP1 | 274C/T | 5’-tgccaccatccctatacccag –3’ 5’-tctcgaaagtgtcccactcag –3’ | 60 | Mnl I | 167;37;12 bp | 102;65;37; 12 bp | Liu J. et al., 1995 |
| 469+14 G/C | 5’-tctctggctgaaggctctcc –3’ 5’-tgtgctatcagttgagcctc – 3’ | 60 | Apa I | 624 bp | 455;169 bp | ||
| 1465-85G/A | 5’-gcaagttgaggagccaagac –3’ 5’-acctgcatcaactcctcttc –3’ | 60 | Bsе 1I | 142;75;24 bp | 102;75;40; 24 bp | ||
| D543N | 5’-gcatctccccaattcatggt –3’ 5’-aactgtcccactctatcctg –3’ | 60 | Bme 18I | 126;79;39 bp | 201;39 bp | ||
| IL12 | A1188C | 5’-ttctatctgatttgcttta –3’ 5’-tgaaacattccatacatcc –3’ | 43 | Taq I | 233 bp | 165;68 bp | Hall M. A. еt al., 2000 |
Продолжение таблицы 5
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 |
| VDR | B/b | 5’-aacttgcatgaggaggagcatgtc-3’ 5’-ggagaggagcctctgtcccatttg-3’ | 60 | Pct I | 813 bp | 505;308 bp | Wilkinson R.J. et al., 2000 |
| F/f | 5’-agctggccctggcactgactctgctct-3’ 5’-atggaaacaccttgcttcttctccctc-3’ | 60 | Fok I | 267 bp | 197;70 bp | ||
| IL1B | +3953 A1/A2 | 5’-gttgtcatcagactttgacc-3’ 5’-ttcagttcatatggaccaga-3’ | 58 | Taq I | 220 bp | 148; 72 bp | Wilkinson R.J. et al., 1999 |
IL1RN | VNTR | 5’-tcctggtctgcaggtaa-3’ 5’-ctcagcaacactcctat-3’ | 60 | А1-410 п.о. (4 повтора) А2-240 п.о. (2 повтора) А3-500 п.о. (5 повторов) А4-325 п.о. (3 повтора) А5-595 п.о. (6 повторов) | Tarlow J.K. et al., 1993 | ||
Еще по теме 2.2.2. Молекулярно – генетические методы анализа полиморфизма генов:
- Клиническая характеристика пациенток, которым проведено генетическое исследование полиморфизма генов FBLN5, LOXL-1 (II клиническая группа)
- 3.4. Анализ связи полиморфизма генов NRAMP1, IL12B, VDR, IL1B, IL1RN с патогенетически важными параметрами болезни
- 3.2. Анализ связи полиморфизма генов NRAMP1, IL12B, VDR, IL1B, IL1RN с туберкулезом
- Молекулярно-генетические методы исследования
- Молекулярно-генетические методы исследования
- Молекулярно-генетические методы исследования - ПЦР- диагностика отделяемого влагалища, цервикального канала
- Определение полиморфизма исследуемых генов
- Результаты исследования полиморфизма генов фибулина 5 (FBLN5), лизилоксидазоподобного -1 белка (LOXL1)
- Полиморфизм генов, предрасполагающих к развитию тромбофилии, у пациенток с трубно-перитонеальным бесплодием
- Полиморфизм генов, предрасполагающих к нарушению ангиогенеза, у пациенток с бесплодиемнеясного генеза
- Полиморфизм генов, предрасполагающих к развитию тромбофилии, у фертильных женщин
NRAMP1
IL1RN