Определение активности супероксиддисмутазы в модификации
Г.Ю. Мальцева, А.В. Васильева (1994)
Для определения активности супероксиддисмутазы (СОД) в эритроцитах крови смешивали раствор 1:50 см3 реагента 1 (2 мМ NaPO x 10 HO, pH 8,3), с 7,5 см3 реагента 2 (0,05 мМ нитросиний тетразолий) и 2 см3 реагента 3 (2,5 мкМ НАДН) непосредственно перед измерением.
Реакционная смесь: 0,32 см3 раствора 1 смешивали с 20 мм3 гомогената отмытых эритроцитов. Старт реакции осуществлялся добавкой 50 мм3 реагента 4 (25 мкМ феназинметосульфат), разведенного в 10 раз.
Режим измерения: время задержки – 10 с., время измерения – 180 с., кинетический режим, температура – 250 C, длина волны на спектрофотометре СФ-46 540 нм, параллельный режим для измерения опытной и контрольной проб. Расчет проводился по формуле:
Активность СОД (усл. ед./мин.) = (1 – A/A )·оп. фон. k·p,
где A – оптическая плотность соответственно в опытной пробе и контроле;
p – разведение пробы;
k – коэффициент, подобранный для анализатора используемого типа.
С целью диагностики супероксиддисмутазы в плазме крови использовался метод, основанный на способности СОД конкурировать с нитросиним тетразолием (НСТ) за супероксидные анионы, образующиеся в результате аэробного взаимодействия восстановленной формы НАДН и феназинметасульфата (ФМС). В результате этой реакции НСТ восстанавливается с образованием гидразинтетразолия. В присутствии СОД процент восстановления НСТ уменьшается.
В пробирки вносят следующие реагенты: плазму крови – 0,05 мл, реагент 1 (62 мг ЭДТА, 500 мг НСТ, 92 мг феназинметасульфата растворяют в 1000 мл фосфатного буфера, рН 7,8) – 2 мл, реагент 2 (76,3 мг НАДН растворяют в 100 мл ТРИС-ЭДТА буфера, рН 8,0) – 0,1 мл.
Реакцию проводят при температуре 250 С. Измерение ведут в кювете с длиной оптического пути 1 см на спектрофотометре СФ-46 при длине волны 540 нм. После перемешивания компонентов пробы в кювете устанавливают начальную экстинкцию. Через 10 мин. измеряют нарастание оптической плотности раствора.
Расчет ведут по формуле:
блокирования, где
Ео – экстинкция реакционной смеси в отсутствии СОД (нулевой пробы) в состоянии равновесия;
Епр – экстинкция исследуемой пробы в состоянии равновесия.
За единицу активности принимают 50% торможения реакции восстановления НСТ, активность фермента выражают в усл.ед. на 1 мг белка.
Еще по теме Определение активности супероксиддисмутазы в модификации:
- Определение активности эритроцитарной супероксиддисмутазы
- Определение концентрации сывороточной супероксиддисмутазы
- Определение активностей глутатионредуктазы и глутатионпероксидазы.
- Определение активности СОД (КФ 1.15.1.1.)
- 3.2.6 Определение фагоцитарной активности макрофагов
- 3.2.4. Определение фенолоксидазной активности C. neoformans
- Определение активности эритроцитарной глутатионпероксидазы
- Определение активности каталазы.
- Методические рекомендации по определению ферментативной активности бактерий
- Определение активности каталазы (Карпищенко А.И., 1999)
- Определение активности дезинфицирующих средств
- Метод определения активности миелопероксидазы в нейтрофильных гранулоцитах (Allen R.C., Stephens J.T. Jr., 2011)
- 3.2.9 Определение цитотоксической активности перитонеальных макрофагов
- Определение активности глутатионредуктазы (Асатиани B.C., 1969)
- Определение субпопуляций лимфоцитов и их функциональной активности
- 5.3 Определение цитотоксической активности макрофагов по отношению к штаммам C. neoformans разной вирулентности
- Метод определения активности катионных белков нейтрофильных гранулоцитов
- Исследование уровня тревожности матерей по Спилбергеру в модификации Ю.Л. Ханина и оценки матерями своих детей (экспертная оценка) по Дембо-Рубинштейн в модификации А.М. Прихожан, интерпретация результатов.