Определение активности дезинфицирующих средств
Метод смывов. Целью метода является выбор режима обработки дезинфицирующими средствами поверхностей в зависимости от концентрации, кратности обработки, расхода средств на 1 м2, экспозиции, температуры, вида поверхности.
Используются тест-объекты 10 х 10 см2 из материалов, подлежащих исследованию.Перед нанесением культуры тест-объекты подвергают механической обработке — мытью с мылом и щеткой. Клеевые поверхности и обои промывают стерильной водопроводной водой. После подсыхания поверхности располагают горизонтально и пипеткой наносят на них 2-миллиардную взвесь из расчета 0,5 мл на 100 см2. Культуру распределяют по поверхности стерильным шпателем, подсушивают при комнатной температуре (18° С). Культуру наносят накануне опыта. Дезинфицирующий раствор наносят из пульверизатора, следя за количеством израсходованной жидкости. Максимальная норма расхода не должна превышать 300—500 мл/м2. Тест-объекты оставляются до полного подсыхания. Контрольные тест-объекты, зараженные аналогично опытным штаммом, орошаются стерильной водопроводной водой (количество стерильной водопроводной воды равно количеству израсходованного дезинфицирующего средства). Пробы забираются с обработанных поверхностей (опыта и контроля) путем тщательного протирания их стерильным, слегка увлажненным тампоном или стерильной марлевой салфеткой 5x5 см2. Затем тампон или салфетку отмывают в 10 мл нейтрализатора или стерильной водопроводной водой в течение 10 мин. Отмывную жидкость с опытных поверхностей вносят в чашки Петри (в 2—3 чашки по 0,5—1 мл в каждую), заливают растопленным и остуженным агаром. Жидкость с контрольных поверхностей перед посевом разводят в 100 раз. Для равномерного распределения микроорганизмов в агаре последний перемешивают круговыми движениями после залива в чашку до застывания. Чашки инкубируют 24 ч при температуре 37° С, после чего производится подсчет колоний, определяется плотность заражения на 100 см2 и процент обеззараживания, принимая количество бактерий, снятых с контроля, за 100%.
Например:С 100 см2 контрольной поверхности снято 148 000 микроорганизмов, а с опытных — 20 микроорганизмов.
148 000 - 100%
20 - х%
х = 0,013% выживших микроорганизмов, следовательно, процент обеззараживания опытной поверхности составляет 99,987%.
Эффективным считается средство, дающее гибель 99,99% рабочего штамма на опытных поверхностях.
Метод отпечатков. На дно чашки Петри помещается марлевый кружок, диаметр которого равен диаметру чашки. С двух сторон по краю марлевого кружка при выкраивании оставляют «стебельки» — полоски марли в 2—3 см, которые выступают за края чашки. Чтобы марля при стерилизации не скатывалась, на нее надо положить кружок фильтровальной бумаги. Затем на марлю выливают расплавленный и слегка остуженный мясо-пептонный агар или среду Эндо. После подсыхания среды без нарушения целостности и стерильности агаровые пластинки вынимают за стебельки и накладывают на исследуемые поверхности для получения отпечатков. Затем агаровые пластинки возвращают в чашку. Термостатируют 24 ч при 37° С. С одной поверхности делается не менее трех отпечатков.
Расчет производится аналогично приведенному выше.
Приложение 50
Допустимые уровни микробной обсемененности постельного и нательного белья в асептических палатах
МУ № 28-6/15-86
| Условия работы | Общее количество микроорганизмов на бактериологической печатке | Количество колоний золотистого стафилококка на бактериологической печатке | Количество грамотрицательных бактерий на бактериологической печатке |
| До поступления больного в асеп- | 0 | 0 | 0 |
| тическую палату | |||
| Во время пребывания больного в | Не более 10 | Не более 5 | Не более 2 |
| асептической палате |
Предельно допустимое содержание непатогенных
микроорганизмов в лекарственных формах____________
| Лекарственные формы | Количество микроорганизмов в 1 см3 | Примечание |
| Вода очищенная | Не более 100 при отсутствии Enlerobacteriaceae, Р. aeruginosa, S. aureus | ФС 42-2619-97 |
| Вода для инъекций | Апирогенность Стерильность | ФС 42-2620-97 |
| Инъекционные растворы после стерилизации | Стерильность | ГФ XI, вып. 2 |
| Глазные капли после стерилизации | Стерильность | ГФ XI, вып. 2 |
| Глазные капли, приготовленные в асептических условиях на стерильной воде | Не более 100 бактерий и грибов суммарно при отсутствии Enterobacteriaceae, Р. aeruginosa, S. aureus | ГФ XI, вып. 2 |
| Основное сырье (субстанции) для производства стерильных препаратов | Стерильность | Изменение к статье ГФ XI, вып. 2 «Методы микробиологического контроля лекарственных средств» (1995 г.) |
| Лекарственные средства | Не более 50 бактерий и | Приказ М3 от |
| для новорожденных (растворы для внутреннего и наружного применения, глазные капли) | грибов суммарно при отсутствии Enterobacteriaceae, Р. aeruginosa, S. aureus | 19.10.1982 г. № 1026 |
| Детские лекарственные средства (до 1 года) | Изменение к статье ГФ XI, вып. 2 «Методы микробиологического контроля лекарственных средств» (1995 г.) |
Примечание: Интервал времени от начала изготовления раствора не должен превышать 3 ч.
Микробиологическая чистота готовых лекарственных средств
(изменения к статье ГФ XI, вып. 2 от 01.06.1996 г.)
| Категория | Применение | Требования |
| і | Для инъекций, инфузий и парентерального введения; в полости тела, где отсутствуют микроорганизмы; глазные препараты; на открытые раны, ожоги | Стерильность |
| 2 | Местно, трансдермально, интравагинально; в полости уха, носа; для ингаляций | Не более 100 бактерий и грибов суммарно в 1 г или 1 мл при отсутствии Enterobacteriaceae, Р. aeruginosa, S. aureus |
| 36 | Детские лекарственные средства (более 1 года) | Не более 500 аэробных бактерий и 50 дрожжевых и плесневых грибов в 1 г или 1 мл при отсутствии Enterobacteriaceae, Р. aeruginosa, S. aureus |
| Зг | Лекарственные средства из синтетического сырья (таблетки, драже, капсулы, гранулы и др.) | Не более 1000 аэробных бактерий и 100 дрожжевых и плесневых грибов в 1 г или 1 мл при отсутствии Е. соіі, Salmonella; не более 100 других кишечных бактерий |
Еще по теме Определение активности дезинфицирующих средств:
- ТЕМА № 2 СТРУКТУРА И ОРГАНИЗАЦИЯ РАБОТЫ АКУШЕРСКОГО СТАЦИОНАРА САНИТАРНО-ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКИЙ РЕЖИМ В АКУШЕРСКОМ СТАЦИОНАРЕ
- СТЕРИЛИЗАЦИОННОЕ И ДЕЗИНФЕКЦИОННОЕ ОТДЕЛЕНИЯ
- РЕНТГЕНОВСКИЕ ОТДЕЛЕНИЯ (КАБИНЕТЫ)
- ОРГАНИЗАЦИЯ И ПРОВЕДЕНИЕ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОГО КОНТРОЛЯ
- Приложение 40 Оборудование дезинфекционной комнаты (уголка)
- Определение активности дезинфицирующих средств
- СОДЕРЖАНИЕ
- Реакция иммобилизации бледных трепонем.
- 5.2. Медицинские средства индивидуальной защиты
- 6.3. Задачи и организационная структура санитарно-эпидемиологического отряда и его подразделений.
- Грипп
- ЛЯМБЛИОЗ
- КЛЕЩЕВОЙ ЭНЦЕФАЛИТ
- КОНГО-КРЫМСКАЯ ГЕМОРРАГИЧЕСКАЯ ЛИХОРАДКА
- Цитомегаловирусная инфекция
- Бруцеллез
- Токсоплазмоз
- Эпидемический паротит
- Методические рекомендации по определению ферментативной активности бактерий
- Введение