ОСТРИЦА -ENTEROBIUS VERMICULARIS

Паразитирует в нижнем отделе тонкого и верхнем отделе толстого кишечника человека. Мелкие гельминты: самки достигают в длину 0,9—1,2 см, самцы — 0,5 см. Задний конец самца закручен на вентральную сторону.

Для диагностики энтеробиоза применяют специальные методы исследования: соскобы и смывы с перианальной области и снятие яиц липкой полиэтиленовой лентой. Исследование кала различными методами дает ничтожно малый процент находок яиц. Наиболее эффективна диагностика энтеробиоза при применении липкой полиэтиленовой ленты. K этому следует добавить простоту исследования и транспортировки препарата — ленты на стекле, завернутого в бумагу. Яйца остриц находятся в липком слое ленты, что исключает возможность их рассеивания, поэтому взятие анализа и отсылку его с пациентом в лабораторию может осуществить любой медицинский работник. Целесообразно использовать ленту шириной 1,5—2 см, отрезая от рулона кусок длиной около 12 см и, держа его руками за концы, прикладывать липким слоем середины ленты к перианальным складкам кожи. Затем ее накладывают на предметное стекло липким слоем вниз. Концы ленты, выходящие за край стекла, отрезают. B лаборатории значительную часть ленты отклеивают, капают под нее 1—2 капли вазелинового масла (для устранения оптических дефектов) и исследуют при малом увеличении микроскопа. Вместо полиэтиленовой ленты можно применять полихлорвиниловую пленку, хотя она и менее удобна.

При отсутствии липкой ленты для обследования на энтеробиоз следует пользоваться методом мазка с ватного тампона в 50% растворе глицерина, хотя этот метод менее эффективен, нежели предыдущий. Для транспортировки тампонов в лабораторию при массовом обследовании можно пользоваться 60-гнез- довым штативом с пробирками, если тампоны на палочке, или несколько модифицированным ящиком — штативом В. Г. Кузнецова (1956), если тампоны на спичках (рис. 54). Как видно из рисунка, он состоит из ящика и двух выдвижных пластин толщиной около 1 см с просверленными гнездами для спичек. Пластины целесообразно изготовлять из термостабильных синтетических, не впитывающих воду материалов, которые можно было бы ошпаривать кипятком (гетинакс, текстолит и др.). Расстояние между гнездами должно быть около 2,5 см, чтобы изменившие форму после смыва тампоны не касались друг друга. Ящик желательно сделать металлическим. Сухие тампоны на спичках заготавливают заранее. Перед работой тампон смачивают 50% раствором глицерина, отжимают и обтирают им пе- рианальные складки, вращая тампон в одну сторону, чтобы не раскручивалась вата. Тампоны вставляют в гнезда пинцетом, начиная с дальнего ряда. Гнезда пронумерованы в соответствии номерам записи исследуемых проб в регистрационном журнале. Хранить тампоны с диагностическим материалом можно много дней. Единичные тампоны можно пересылать в лабораторию в пенициллиновых флаконах, где с них готовят и исследуют мазки в капле 50% раствора глицерина прямо на предметном стекле. Это метод эффективнее соскоба шпателем из спички и

Рис. 54. Усовершенствованный ящик-штатив В. Г. Кузнецова для транспортировки тампонов на спичках (по Ю. А. Березанцеву и E. Г. Ав- тушенко, 1976).

отмывания тампона в пробирке, центрифугирования, с последующим исследованием осадка. Трудоемкие флотационные методы отделения яиц с тампона не показали преимуществ.