Микрофлора, выделенная у больных с гнойными воспалительными заболеваниями придатков матки.
С целью изучения микрофлоры при ГВЗПМ выполнено два этапа исследований. Первый этап - забор материала, посев его на питательные среды для получения культур микроорганизмов и последующей их идентификации.
Па втором этапе изучали антибиотикочувствителыюсть выделенных культур микроорганизмов. Всего было проанализировано 96 образцов и выделено 62 культуры микроорганизмов.Таблица 17
Количество культур микроорганизмов, выделенных из различных материалов, при гнойных воспалительных заболеваниях придатков матки
| Исследуемый материал | ' Количество выделенных кулыур | |
| Абсолютные цифры | 1 % | |
| Ьиоптаты из очага поражения | 66 | _______ 53.22 ________ |
| Экссудат из брюшной | 18 | 14.51 |
| полости | ||
| Отделяемое цервикального ка | 40 | 32,25 |
| нала | ||
| Итого j | | 124 | 100 |
Идентификация выделенных аэробных и факультативно-анаэробных культур проводилась с учетом морфо-тинкториальных, культуральных и биохимических свойств. Первичную идентификацию выделенных культур проводили на основании характера роста и ферментации лактозы на среде Эндо. Отобранные колонии отсевали на среду Клиглсра и производили микроскопию, в результате чего отнесли часть культур к неферментирующим грам(-) бактериям, часть к грам(-ь) коккам и микроорганизмам семейства Entcrobactcriaceac.
Грам(+) каталазопозитивные кокки отнесены к роду Staphylococcus, каталазонегативные - к роду Enterococcus. Для окончательного определения прииадлеж-
ности микроорганизмов к роду Staphylococcus использовали
следующие тесты: определение ферментации глюкозы в анаэробных условиях на среде Хыо-Лейфсона (OF-тест), рост при 45°С. После этого проводили коагулазный тест.
Для видовой идентификации коагулазоотрицательных микроорганизмов рода Staphylococcus изучали биохимические свойства: окисление углеводов (маннита, мальтозы, сахарозы, лактозы, ксилозы, трегалозы). На основании полу чеши,їх результатов коагулазоотрицательные культуры рода Staphylococcus были отнесены к видам: S. hominis, S. epidermidis, S. saprofitikus, S. haemolyticus, S. capitis, S. shleiferi (табл. 18).
Таблица 18
Идентификация выделенных из брюшной полости культур микроорганизмов рода Staphylococcus
| Вид | І ! rt | OF-тест | Рост при 45°C | 1 і cl | Число | ||||||||
| 1 | rt H о | 2 n | u о u, о S3 | u a P | c, >» r; | 2 | r' U О | о 11 | і S j s ! | s' | штаммов | ||
| 1 | c3 | О | о | о | о | CJ | о | 0J | J | ||||
| 1 | CL, | a. | C-i | H | C_ „ | о | |||||||
| l_L | E. laecalis | - | + | £ | 10 | ||||||||
Примечание: ЖІЦЛ-жслчво-ще.ючной агар, ТТХ - 2,3,5-зетразолиохлорид
Также проводился оксидазный тест. Дальнейшую идентификацию бактерий семейства Enterobacteriaceae продолжали на наборе специализированных сред с ацетатом, цитратом, арабинозой, рамнозон, сорбитом, лизином (табл. 20).
Таблица 20
Идентификация культур семейства Enterobacteriaceae
| I Среда Клиглсра | Дополнительные | гесты | 1 •" | ||||||||||
| Ко | Вид | Глюкоза | со !*» О | Г CZ5 ГЧ | і » Ацетат і | 1 Цитрат | і S S3 g | Индол 1 | сз с*> С vo сз а. < | Рамноза | 1 1 | Число ні гаммой | |
| 1 | Е. coli | £ | £ | £ | - | - | £ | -г | -Г | £ - | £ | 4 “ | |
| 2 | Р. inirabilis | 4- | - | £ | - і | ;—j | - | 5 | |||||
Выделенные культуры микроорганизмов семейства Enterobacteriaceae были отнесены к видам: Escherichia coli, Proteus mirabilis.
Идентификацию неферментирующих грам(-) бактерий проводили по ряду тестов: оксидазному, окислению п ферментации глюкозы (OF-тсст), окислению 10% лактозы, подвижности, индолу,росту при 42°С (табл. 21). Выделенные неферментирующие грам(-) бактерии на основании полученных данных были отнесены к видам: Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa.
Таблица 21
Идентификация неферментирующих грамотрицательных бактерий
| I № | Вид | 2 •-> U V 1 1 | >Х | о о 5 5 г 2 4- | 03 f* 03 г* X и х __ | § 5 | 1 •чг г*і | Cl -г б. с н | р 1 j Число штаммов 1 t 2 ; |
| , .1 | A. baumannii | ||||||||
| ! 2 | Р. aeruginosa | I * | - | ♦ | - | ♦ 2 | |||
На рис. 5 и 6 представлен видовой состав микрофлоры, выделенной из брюшной полости у больных исследуемых групп.
Bscteroldes ureolyticus
Porphyromonss endodorttsHs
PrOf>IOrHt>9Ct9rtum 9СП99
Peptostreptococcus spp
10%
—I—
20%
—I—
25%
15%
Bscitlus spp
Fusobocterium
ЕиЬлс
Enterocoa
“I
30%
HEubtctorlum fentum DEubbcterium Urnvsum UBtclHus capitlosus ? ? Pstr.
pnvot/iРис. 5. Видовой сослав микрофлоры, выделенной из брюшной полости у больных основной группы (темным цветом обозначена аэробная и факультативно- анаэробная микрофлора, светлым - анаэробная микрофлора)
OPstr. anaerobius ■ S. haemolyticus и S. shleifen
О Pau. micros
■ S. hominis
■ E. coli
QPstr prevotii О S. capitis Ы Proteus mirabilis
Рис. 6. Видовой состав микрофлоры, выделенной из брюшной полости у больных іруппьі сравнения (темным цветом обозначена аэробная и факультативно-анаэробная микрофлора, светлым - анаэробная микрофлора)
Как видно из представленных данных, наиболее часто у больных основной группы выделялись микроорганизмы родов Eubacterium (26,31%), Bacillus (15,78%), Peptostreptococcus (15,78%), а также Fusobacterium nucleatum (15,78%). Анаэробные микроорганизмы - Bacteroides ureolyticus, Porphyromonas endodontalis, Propionibacte- rium acnes - выделялись в 5,26% случаев. Enterococcus faecal is и Pseudomonas aeruginosa также были выделены в 5,26% случаев.
В группе сравнения наиболее часто встречались микроорганизмы родов Staphylococcus (21,73%) и Peptostreptococcus (21,73%). Propionibacterium acnes был выделен у 13,04% больных; микроорганизмы семейства Enterobacteriaceac (Proteus mirabilis и Е. coli) и Enterococcus faecalis были выделены в 8,69% случаев. Clostridium tyrobutiricum, Porphyromonas asaccarolytica, Prevotella oralis, Acinetobacter baumannii, Bacillus spp. были выделены в 4,34% случаев.
Необходимо отметить, что микрорганизмы рода Eubacterium (Е. limosum и Е. lentum) встречались только в основной группе (26,31%) и не встречались в группе сравнения (р
Еще по теме Микрофлора, выделенная у больных с гнойными воспалительными заболеваниями придатков матки.:
- Обоснование возможности проведения консервативного лечения больных с гнойными воспалительными заболеваниями придатков матки.
- 7.1. Клинико-лабораторная характеристика исходного состояния больных с гнойными воспалительными заболеваниями придатков матки.
- Клиническая картина гнойных воспалительных процессов придатков матки
- Клинико-иммунологические особенности гнойных воспалительных процессов придатков матки
- Современные аспекты этнологии и патогенеза гнойных воспалительных заболевании придатков матки.
- Патогенетическое обоснование и современные методы лсчешпі гнойных воспалительных заболевании придатков матки
- Белки острой фазы воспаления и макроглобулины при гнойных воспалительных заболеваниях придатков матки.
- гнойные мешотчатые образования придатков
- Чувствительность выделенной микрофлоры к антибактериальным препаратам
- 3.4.1.2. ТЕМА: Методика проведения исследования матки и придатков.
- 1. Особенности методики проведения трансабдоминального УЗИ матки и придатков.
- 2. Особенности методики проведения трансвагинальнго УЗИ матки и придатков.
- Гнойно-воспалительные заболевания новорожденных
- Раздел 3.4.1. Ультразвуковая диагностика заболеваний матки и придатков.
- Лечение вагинальных выделений, обусловленных раком шейки матки
- 3.1. Структура гнойно-воспалительных заболеваний лица и шеи
- Гнойно- воспалительные заболевания.
- Гнойно-воспалительная патология глотки:
- Классификация и особенности клинического течения одонтогенных гнойно-воспалительных заболеваний челюстно - лицевой области
- Одонтогенные гнойно-воспалительные процессы челюстно-лицевой области