Роль макрофагов.
Выше было показано, что общепатогенное действие как грам-отрицательной, так и в значительной мере грам-поло- жительной микрофлоры связано с поступлением в кровоток больших количеств чужеродных антигенов.
Помимо бактериальных антигенов таковыми при SIRS могут служить продукты разрушения тканей, денатурированные белки экссудатов, тканевые ферменты (Ерю- хин И. А. с соавт., 1989; Рыбачков В.В., Малафеева Э.В., 1986; Лоба- ков А.И., 1987). Все эти чужеродные для организма вещества должны быть распознаны, разрушены и элиминированы из организма.В организме человека и высших животных существует две эволюционно выработанные системы дезинтоксикации (Лопаткин Н.А., Лопухин Ю.М., 1989) — это ферментное расщепление в гепатоцитах для обезвреживания низкомолекулярных веществ и СФМ — для обезвреживания средне- и высокомолекулярных. Поскольку перечисленные чужеродные антигены относятся ко второй группе веществ, то центральная роль СФМ как мишени при SIRS для чужеродных антигенов становится очевидной (Mathison J.C., Ulevitch R., 1979; Peavy D. L., Brandon C.L., 1980; Proctor R.A. et al., 1980; Maier R.V., Ulevitch R.J., 1981).
Действительно, при SIRS Мф претерпевают морфологические изменения, характерные для таковых при антигенной стимуляции независимо от природы стимулирующего агента (Маянский А.Н., Маян- ский Д.Н., 1989). При этом отмечается набухание клеток, увеличение объема и просветление цитоплазмы за счет накопления в ней повышенного количества лизосом, причем начинают преобладать вторичные лизосомы, что свидетельствует о повышении фагоцитарной активности Мф (Gadaleanu V., Craciun С., 1982). Нередко при этом также наблюдаются увеличение числа и размеров митохондрий, расширение цистерн гладкого эндоплазматического ретикулума и гшас-
тинчатого комплекса, что отражает интенсивность протекающих в клетке обменных процессов (Маянский А.Н., Маянский Д.Н., 1989; Gadaleanu V., Craciun С., 1982; du Bois R.M., 1985; Van Bossuit H., Wis- se E„ 1988).
В случаях выраженного SIRS изменения в Мф могут не ограничиваться описанными выше. Кроме них могут наблюдаться также вакуолизация Мф и утрата ими контакта с эндотелием. Поскольку до 90% всех фиксированных Мф в организме составляют ЗРЭ печени (Jones Е. А., 1982), то ведущая роль последних в иммунном ответе на антигенную стимуляцию при SIRS очевидна (Mathison J.C., Ulevitch R., 1979; Parent J.B., 1989).
Как в экспериментах in vivo (Johnson С.Л., Greisman S.E., 1985; Moore F.D.Jr., Davis C.F., 1989), так и in vitro показано, например, непосредственное поглощение БЭ Мф и, в частности, ЗРЭ, при этом БЭ обнаруживались в их вакуолях и вторичных лизосомах (Van Bossuit Н. et al., 1988а). Н. Van Bossuit с соавт. (1988а) продемонстрировали, что фагоцитарная активность ЗРЭ в клеточной культуре при этом не меняется, однако повышается туморицидная активность по отношению к фибросаркоме мышей L929. Данные же других авторов свидетельствуют о повышении фагоцитарной активности Мф. Так R. Utili с со- авт. (1984) показали, что после добавления БЭ к культуре ЗРЭ последние на 12% активнее поглощали и на 5% активнее убивали бактерии по сравнению с контролем. Повторные дробные введения БЭ увеличивают фагоцитарную активность клеток СФМ в 2-3 раза (Lanser М.Е., 1990). Более того, поскольку лабораторные животные с санированным от микроорганизмов кишечником оказываются чрезвычайно чувствительными к БЭ, возникла гипотеза о том, что БЭ, поступающие из кишечника с портальной кровью, играют в норме важную физиологическую функцию в поддержании фагоцитарной активности СФМ (Lanser М.Е., 1990).
Доказано, что помимо БЭ активирующими факторами для Мф могут служить комплексы антиген-антитело, продукты активации комплемента, некротические ткани (Morrison D.C., Ryan J.L., 1987), грам-положительные бактерии, фрагменты их стуктур и внеклеточные продукты, дрожжевые грибы, вирусы (Atkins Е., 1984).
Активация Мф под действием стимуляторов сопровождается повышением не только фагоцитарной, но и их секреторной активности.
В ответ на стимуляцию они секретируют протеазы (Маянский А.Н.,
Маянский Д.Н., 1989), PG и Тх (Birmelin М. et al., 1986; Maier R.V., Ulevitch R.J., 1981a), активные формы кислорода (Маянский А.Н., Маянский Д.Н., 1989), ИЛ-1 (Arend W.P. et al., 1986; Sacco-Gibson N. A., Filkins J.P., 1989; Kmiec Z., 2001), ФНО (Маянский A.H., Маян- ский Д.Н., 1989; Beutler B.A., 1989), интерферон (Kaufmann S.H.E., 1990), компоненты С (du Bois R.M., 1985) и ряд других секреторных продуктов (Kesav S. et al., 1990).
Большинство из этих факторов являются биологически активными веществами и играют различную роль в механизме SIRS. Показано, что блокада СФМ инертным материалом приводит к тому, что при введении экспериментальным животным БЭ или микробной взвеси SIRS и инфекционно-токсический шок не развиваются (Doran J.E., Lundsgaard-Hansen P., 1988). Это является неоспоримым доказательством центральной роли СФМ в реализации SIRS. Об этом же свидетельствуют и эксперименты с мутантными мышами линии C3H/HeJ (Morrisson D.C., 1983). Период полуразрушения меченных изотопами БЭ у них и в контроле был одинаковым, однако явления SIRS у них не вызывались, что связано не с невозможностью для БЭ достичь потенциальные клетки-мишени, а с генетическим дефектом, благодаря которому БЭ не распознаются как чужеродные антигены, а Мф не активируются.
Ключевая роль Мф как источников биологически активных веществ при SIRS наглядно продемонстрирована в эксперименте J. A. Goris с со- авт. (1986). Эти исследователи вводили внутрибрюшинно крысам растворенный в парафине зимозан, являющийся водонерастворимым стимулятором Мф, и получали клиническую картину SIRS, аналогичную таковой при гнойном перитоните. Сходные результаты получили и S.V. Chensue с соавт. (1989), вводившие мышам внутрибрюшинно полный адъювант Фрейнда и показавшие, что эффект связан с синтезом перитонеальными Мф ИЛ-1 и ФНО. Эти в высшей степени важные результаты убедительно показывают, что в патогенезе SIRS решающее значение имеют не сами бактерии или продукты их жизнедеятельности, а биологически активные вещества, выделяемые активированными Мф.
Еще по теме Роль макрофагов.:
- Макрофаги.
- Макрофаги
- 1. Макрофаги и моноциты.
- 3.2.9 Определение цитотоксической активности перитонеальных макрофагов
- 3.2.8 Определение уровня продукции цитокинов макрофагами
- 3.2.5 Получение перитонеальных макрофагов и культивирование их in vitro
- 2.3 Факторы микробоцидности макрофагов
- ГЛАВА 5 Взаимодействие штаммов C. neoformans разной вирулентности с перитонеальными макрофагами in vitro
- 3.2.6 Определение фагоцитарной активности макрофагов
- 5.3 Определение цитотоксической активности макрофагов по отношению к штаммам C. neoformans разной вирулентности
- 5.2.1 Влияние штаммов C. neoformans разной вирулентности на способность макрофагов к продукции супероксид анионов in vitro
- 5.4 Оценка спектра цитокинов, вырабатываемых макрофагами, при взаимодействии с криптококками in vitro
- 2.1 Взаимодействие C. neoformans с макрофагами
- 5.2.2 Влияние штаммов C. neoformans разной вирулентности на способность макрофагов продуцировать нитроксидные радикалы in vitro
- 5.2 Влияние штаммов C. neoformans разной вирулентности на продукцию факторов микробоцидности перитонеальными макрофагами
- Глава 2 РОЛЬ МАКРОФАГОВ B ФОРМИРОВАНИИ ГРАНУЛЕМИ РАЗВИТИИ ГРАНУЛЕМАТОЗНОГО ВОСПАЛЕНИЯ
- 2.2 Роль опсонинов в иммунном ответе при криптококкозе