ПРАВИЛА ПОЛУЧЕНИЯ КЛИНИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА ДЛЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ПРИ ВНЕБОЛЬНИЧНОЙ ПНЕВМОНИИ

Правила получения венозной крови для культурального исследования

1. Для сбора крови используются специальные герметично закрывающиеся стеклянные фла­коны или флаконы из ударопрочного автоклавируемого пластика двух видов, содержащие питательную среду (для выявления аэробов и анаэробов).

2. С целью бактериологического исследования до АБТ забираются 2 образца венозной крови с интервалом 20-30 минут из различных периферических вен - например, левой и правой локтевой вены. Один образец помещается во флакон для выделения аэробов, другой для выделения анаэробов.

3. Объем крови при каждой венепункции должен составлять не менее 10 мл (оптимальное соотношение кровь/среда должно быть 1:5-1:10).

4. При получении образцов крови необходимо соблюдать следующую последовательность действий: Произвести дезинфекцию кожи в месте венепункции циркулярными движениями от центра к периферии дважды 70% раствором спирта или 1-2% раствором йода. Дождаться полного высыхания дезинфектанта. Не касаться места венепункции после обработки кожи. Произвести получение крови шприцем и асептически перенести ее во флакон с транспорт­ной средой непосредственно через резиновую пробку. Удалить оставшийся йод с поверхно­сти кожи после венепункции, чтобы избежать ожога.

5. До момента транспортировки образец вместе с направлением хранится при комнатной тем­пературе или в термостате. Необходимо стремиться к тому, чтобы время доставки образца в лабораторию не превышало 2 часа.

Правила получения свободно отделяемой мокроты для культурального исследования

1. Для сбора мокроты необходимо использовать стерильные герметично закрывающиеся пластиковые контейнеры.

2. Мокрота собирается в как можно более ранние сроки с момента госпитализации и до начала АБТ.

3. Перед сбором мокроты необходимо попросить пациента тщательно почистить зубы, вну­треннюю поверхность щёк, прополоскать рот кипяченой водой.

4. Пациент должен хорошо откашляться и собрать отделяемое из нижних дыхательных путей (не слюну!) в стерильный контейнер.

5. Сбор мокроты необходимо производить в стерильные контейнеры, которые должны быть доставлены в микробиологическую лабораторию не позднее, чем через 2 часа с момента получения материала.

6. Для облегчения процедуры сбора мокроты и повышения качества собираемого образца целесообразно использовать памятки для пациентов.

Клинически значимым является выявление условно-патогенных возбудителей количественным методом в диагностически значимых титрах (106 микробных клеток и более в 1 мл мокроты).

Для получения индуцированной мокроты можно использовать следующие приемы:

1. Дренажные положения (постуральный дренаж).

2. Упражнения дыхательной гимнастики.

3. Вибрационный массаж грудной клетки.

4. Ультразвуковые ингаляции в течение 15-20 минут с использованием гипертонического рас­твора хлорида натрия в концентрации 3-7%.

У пациентов с бронхиальной астмой ингаляции должны проводиться с осторожностью, для предупреждения бронхоспазма целесообразно предварительно провести ингаляцию 200-400 мкг Сальбутамола.

Правила получения трахеального аспирата для культурального исследования

1. Для получения трахеального аспирата используют систему для сбора содержимого трахео­бронхиального дерева через эндотрахеальную трубку.

2. С этой целью стерильный катетер вакуум-аспиратора соединяют с клапанным вакуум-кон- тролем с заглушкой на системе, другой конец системы подсоединяют к эндотрахеальной трубке.

3. Включают вакуум-аспиратор и собирают в пробирку системы содержимое трахеобронхи­ального дерева в количестве не менее 1 мл. Время сбора трахеального аспирата не должно превышать 5-10 секунд.

4. Отсоединяют аспиратор, эндотрахеальную трубку от системы, снимают крышку со встроен­ными катетерами и закрывают пробирку дополнительной завинчивающейся крышкой.

5. Продолжительность хранения трахеального аспирата при комнатной температуре не должна превышать 2 ч.

Правила получения плевральной жидкости для культурального исследования

1. Очистите выбранный участок кожи 70% этиловым спиртом; затем продезинфицируйте его 1-2 % раствором йода; избыток йода удалите

2. марлевой салфеткой, смоченной 70% спиртом во избежание ожога кожи пациента.

3. С тщательным соблюдением правил асептики выполните чрезкожную аспирацию для получе­ния пробы плевральной жидкости.

4. Удалите любые пузырьки воздуха из шприца и немедленно перенесите пробу в стерильный пластиковый контейнер, плотно закроете его крышкой.

5. Продолжительность хранения плеврального пунктата при комнатной температуре не долж­на превышать 2 ч. При невозможности доставки в указанный срок образец может хранится в холодильнике при температуре +4-8 C0 до 24 часов.