<<
>>

Амплификация дц-кДНК

11. Для каждого образца первой цепи кДНК приготовьте

реакционную смесь для ПЦР, смешивая реагенты в указанном
порядке:
80 мкл стерильная вода;
10 мкл 10х буфер для ПЦР (Encyclo PCR buffer);
2 мкл 50х смесь dNTP (10 мМ каждой);
4 мкл праймер для ПЦР М1 (PCR primer М1, 10
мкМ);
2 мкл 50х полимераза Encyclo;
2 мкл первая цепь кДНК (со стадии 10);
100 мкл суммарный объем.

Внимание! Если первая хранилась перед этим на -20°C, ее надо разморозить и прогреть 1 мин при 65°С для дезагрегации ДНК.

Оставшаяся первая цепь кДНК может быть повторно заморожена.

12. Аккуратно перемешайте компоненты реакционной смеси, сбросьте капли со стенок пробирки на настольной центрифуге.

13. Распределите по 25 мкл реакционной смеси в четыре пробирки для ПЦР.

14. Если амплификатор не имеет нагревающейся крышки, добавьте каплю минерального масла в каждую ПЦР-пробирку. Закройте пробирки, поместите их в амплификатор.

15. Осуществите ПЦР амплификацию кДНК, используя следующую программу:

Стадия Количество

циклов

Температура,

°C

Время

инкубации

Предварительная

денатурация

1 95 1 мин
Циклы ПЦР 15 95 15 с
66 20 с
72 3 мин

16.

После окончания программы достаньте из амплификатора одну пробирку, остальные подвергните еще трем циклам ПЦР.

17. После 18 циклов достаньте из амплификатора еще одну пробирку, остальные подвергните еще трем циклам ПЦР.

18. После 24 циклов достаньте из амплификатора еще одну пробирку, а последнюю пробирку подвергните еще трем циклам

ПЦР.

19. Проведите анализ продуктов ПЦР с помощью гель- электрофореза (1,2 % агароза, TAE буфер с добавлением бромистого этидия, 4 мкл продукта ПЦР на дорожку) параллельно с 50 нг маркера длин ДНК (1 kb DNA ladder).

20. Сравните результат гель-электрофореза с приведенным на рис. 3.2. Определите оптимальное количество циклов ПЦР для каждого экспериментального образца исходя из следующих рекомендаций:

- отсутствие изменений в концентрации продукта ПЦР при добавлении циклов указывает на то, что реакция вышла на плато. Оптимальное для амплификации образца количество циклов должно быть на 1-2 цикла меньше необходимого для выхода реакции на плато;

- при оптимальном количестве циклов ПЦР, продукт реакции при визуализации гель-электрофорезом обычно имеет следующие характеристики:

а) шмер умеренной интенсивности в области 0,25-3 т.п.н. с максимумом плотности 0.5-2 т.п.н. Интенсивность шмера должна примерно соответствовать той, которую имеют образцы кДНК, показанные дорожке 2 на рис. 3.2 (сравнение относительно интенсивности маркера).

Внимание! Если интенсивность шмера не нарастает с увеличением циклов ПЦР и смещена к лунке (например, как на дорожке 4 рис. 3.2), значит, образец кДНК подвергся избыточной амплификации.

Если интенсивность шмера существенно ниже (например, как на дорожке 1 рис. 3.2), значит, количество циклов ПЦР было недостаточно для амплификации этого образца.

б) наличие нескольких ярких полос, соответствующих высокопредставленным транскриптам. «Размывание» характеристических полос свидетельствует об избыточном количестве циклов ПЦР.

21. Сохраните продукт ПЦР с оптимальным числом циклов. Внимание! Избыточное число циклов ПЦР приводит к

возникновению неспецифических продуктов, что крайне нежелательно для выполнения дальнейших процедур.

Продукт ПЦР можно хранить при -20C в течение, по меньшей мере, шести месяцев.

Рис. 3.2. Амплифицированная кДНК кораллового полипа Clavularia. Количество циклов ПЦР, которому подвергся образец кДНК указано наверху. В данном случае оптимальному числу циклов ПЦР подвергся образец, нанесенный на дорожке 2

3.3.

<< | >>
Источник: Ребриков Д.В. и др.. Применение современных молекулярно-биологических методов для поиска и клонирования полноразмерных нуклеотидных последовательностей кДНК: Учебное пособие. М.: НИЯУ МИФИ,2011. - 88 с.. 2011

Еще по теме Амплификация дц-кДНК:

  1. Амплификация 3'-концевых фрагментов кДНК, 3'- RACE
  2. Задача 2. Синтез первой цепи и амплификация двухцепочечной кДНК
  3. Протокол I раунд амплификации
  4. Протокол Синтез первой цепи кДНК
  5. раунд амплификации
  6. раунд амплификации
  7. Синтез кДНК на матрице суммарной РНК (задача 2)
  8. Приборное обеспечение реакций амплификации
  9. Протокол Амплификация полной кодирующей последовательности гена флуоресцентного белка Clavularia
  10. ПРАКТИЧЕСКАЯ РАБОТА №6 Тема: ПЦР-амплификация с ДНК-зондами флуоресцентно меченными ДФ-520/560
  11. Методы амплификации нуклеиновых кислот.
  12. Задача 3. Амплификация 3'-концевого участка гена флуоресцентного белка из кораллового полипа Clavularia (3'- RACE)
  13. Задача 4. Амплификация, клонирование и экспрессия гена флуоресцентного белка Clavularia, отбор целевых клонов
- Акушерство и гинекология - Анатомия - Андрология - Биология - Болезни уха, горла и носа - Валеология - Ветеринария - Внутренние болезни - Военно-полевая медицина - Восстановительная медицина - Гастроэнтерология и гепатология - Гематология - Геронтология, гериатрия - Гигиена и санэпидконтроль - Дерматология - Диетология - Здравоохранение - Иммунология и аллергология - Интенсивная терапия, анестезиология и реанимация - Инфекционные заболевания - Информационные технологии в медицине - История медицины - Кардиология - Клинические методы диагностики - Кожные и венерические болезни - Комплементарная медицина - Лучевая диагностика, лучевая терапия - Маммология - Медицина катастроф - Медицинская паразитология - Медицинская этика - Медицинские приборы - Медицинское право - Наследственные болезни - Неврология и нейрохирургия - Нефрология - Онкология - Организация системы здравоохранения - Оториноларингология - Офтальмология - Патофизиология - Педиатрия - Приборы медицинского назначения - Психиатрия - Психология - Пульмонология - Стоматология - Судебная медицина - Токсикология - Травматология - Фармакология и фармацевтика - Физиология - Фтизиатрия - Хирургия - Эмбриология и гистология - Эпидемиология -