<<
>>

2.7.1 Метод микроразведений в жидкой питательной среде – CLSI M27- A3

В данном исследовании применяется версия протокола (2008 г.) и критерии интерпретации результатов (2008 г. и 2012 г.).

Инокулюм готовили из 5 колоний 24-часовой культуры Candida spp.

на чашке Петри, суспендируя их в 5 мл 0,85% стерильного раствора NaCl до соответствия стандарту мутности 0,5 McFarland (1х106 – 5х106 клеток/мл). Рабочие суспензии далее разводили 1: 50 0,85% стерильным раствором NaCl, затем жидкой средой RPMI 1640 - 1: 20 (1х103 -5х103 ) клеток/мл.

Для приготовления разведений субстанции противогрибковых препаратов промышленного приготовления (Sigma, Германия) флуконазол растворяли в стерильной воде, другие препараты (каспофунгин, позаконазол, вориконазол) – в диметилсульфоксид (ДМСО). Далее готовили основные растворы противогрибковых препаратов в концентрации 1280 мкг/мл. Затем, в соответствии со схемами, указанными в стандарте, разводили рабочие растворы противогрибковых препаратов: для вориконазола, позаконазола диапазон концентраций устанавливали от 0,0313 до 16 мкг /мл, для флуконазола - от 0,125 до 64 мкг /мл, для каспофунгина – от 0,015 до 8 мкг

/мл.

Выполнение микроразведений в жидких питательных средах проводили в стерильных одноразовых, 96-луночных планшетах с U- образными лунками. Двукратные концентрации препаратов вносили в ряды с

1 по 10 лунки планшета в объеме 100 мкл микроканальными пипетками. Первые лунки рядов содержали самые высокие (64 или 16 мкг/мл)

концентрации препарата, а десятые лунки - самые низкие концентрации препарата (0,12 или 0,03 мкг/мл). Далее в каждую лунку планшета вносили по 100 мкл соответствующего двойного разведения суспензии инокулюма, таким образом, получая разведения препарата и плотность инокулюма в конечной концентрации. Лунки контроля роста содержали 100 мкл стерильной среды, без препарата с соответствующим разведением суспензии инокулюма. Последнюю лунку планшета использовали для контроля стерильности (среда без препарата).

В качестве контроля качества исследования использовали тест-культуру C. parapsilosis ATCC 22019

(РКПГY-1245). Планшеты инкубировали в термостате при температуре 350С

в течении 24 часов. Учет результатов производили визуально с использованием следующей цифровой шкалы: 0 - оптически прозрачно,1- легкая мутность, 2- заметное снижение (~ 50%) видимого роста, 3 – слабое подавление видимого роста, 4 – нет подавления видимого роста. Далее сравнивали с критериями интерпретации МПК флуконазола, вориконазола и каспофунгина (2008 г., 2012г) указаны в таблицах 6 и 7.

Таблица 6 – Критерии интерпретации CLSI M27-S3 (2008 г.)

Препарат

Диапозон МПК (мкг/мл)

Чувствительные (Ч)

Умеренно-

чувствительные

(УЧ)

Усточивые (У)

Флуконазол 64
Вориконазол 4
Каспофунгин 2

Таблица 7 – Критерии интерпретации результатов определения

чувствительности (CLSI M27-S4, 2012 г.)

Препарат

Виды

Диапозон МПК (мкг/мл)

Чувствительны е (Ч)

Умеренно-

чувствительные

(УЧ)

Усточивые (У)

Флуконазол

C.albicans 8
C. glabrata - 64
C.krusei природно устойчив к флуконазолу
C.parapsilosis 8
C.tropicalis 8

Вориконазол

C.albicans 1
C. glabrata - - -
C.krusei 2
C.parapsilosis 1
C.tropicalis 1

Каспофунгин

C.albicans 1
C. glabrata
<< | >>

Еще по теме 2.7.1 Метод микроразведений в жидкой питательной среде – CLSI M27- A3:

  1. 4.1 Результаты определения чувствительности возбудителей инвазивного кандидоза методом CLSI M27-A3.
  2. 4.2 Результаты определения чувствительности возбудителей инвазивного кандидоза методом CLSI M44 - A
  3. 2.7.2 Диско-диффузионный метод определения чувствительности - CLSI M44-A
  4. 2 Методы физико- химического контроля белковых гидролизатов и приготовляемых на их основе питательных сред
  5. 3.2.10.1 Определение чувствительности C. neoformans к флуконазолу и вориконазолу (CLSI M44-A)
  6. Проецирование образа во внешней среде.
  7. Распространение звука в среде
  8. ОСОБЕННОСТИ ПЕРЕДВИЖЕНИЯ (ПРЕОДОЛЕНИЯ ПРОСТРАНСТВА) В ВОДНОЙ СРЕДЕ
  9. Глава 2. Состав и содержание липидов 31 ігіірогл в зависимости от концентрации фосфатов в среде
  10. Стерилизация жидких питательных сред
  11. Оптимизация состава питательных сред
  12. Основные принципы гигиенического нормирования химических веществ в производственной и окружающей среде
  13. Гигиеническое нормирование химических веществ в водной среде
  14. Глава 4. Влияние концентрации фосфатов в среде на фракционный состав полярных липидов у других мицелиальных грибов
  15. Часть II НОРМИРОВАНИЕ ВОЗДЕЙСТВИЯ ХИМИЧЕСКИХ ВЕЩЕСТВ В ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЕ
  16. УНИЧТОЖЕНИЕ ИКСОДОВЫХ КЛЕЩЕЙ ВО ВНЕШНЕЙ СРЕДЕ И НА ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ
  17. Приготовление питательных сред
  18. Состав питательных сред
- Акушерство и гинекология - Анатомия - Андрология - Биология - Болезни уха, горла и носа - Валеология - Ветеринария - Внутренние болезни - Военно-полевая медицина - Восстановительная медицина - Гастроэнтерология и гепатология - Гематология - Геронтология, гериатрия - Гигиена и санэпидконтроль - Дерматология - Диетология - Здравоохранение - Иммунология и аллергология - Интенсивная терапия, анестезиология и реанимация - Инфекционные заболевания - Информационные технологии в медицине - История медицины - Кардиология - Клинические методы диагностики - Кожные и венерические болезни - Комплементарная медицина - Лучевая диагностика, лучевая терапия - Маммология - Медицина катастроф - Медицинская паразитология - Медицинская этика - Медицинские приборы - Медицинское право - Наследственные болезни - Неврология и нейрохирургия - Нефрология - Онкология - Организация системы здравоохранения - Оториноларингология - Офтальмология - Патофизиология - Педиатрия - Приборы медицинского назначения - Психиатрия - Психология - Пульмонология - Стоматология - Судебная медицина - Токсикология - Травматология - Фармакология и фармацевтика - Физиология - Фтизиатрия - Хирургия - Эмбриология и гистология - Эпидемиология -