НЕКОТОРЫЕ СОВРЕМЕННЫЕ ВНЕЛАБОРАТОРНЫЕ И ЛАБОРАТОРНЫЕ МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ, ПРИМЕНЯЕМЫЕ В СУДЕБНО- МЕДИЦИНСКОЙ ПРАКТИКЕ

В настоящей главе изложены некоторые методы иссле­дования, имеющие практическое значение при различных видах экспертизы трупа, живых лиц и вещественных дока­зательств.

Физические методы исследования

Люминесцентный анализ.

Во всех случаях для люминесцентного исследования не­обходим сильный источник света, ультрафиолетовые или синие фильтры, находящиеся между источником и объек­том, и запирающие фильтры (желтые или оранжевые), от­секающие возбуждающий свет и пропускающие только вызванное свечение. В зависимости от целей исследования и объектов могут применяться различные комбинации фильтров. При исследовании может наблюдаться собст­венная люминесценция объекта, люминесценция при воз­действии на объект химических агентов и люминесценция объектов, окрашенных специальными красителями (флюо- рохромами).

Приборы и пособия: осветитель «Ультрасвет» (рис. 87), лю­минесцентный микроскоп МЛ-2 (рис. 88), люминесцентный осветитель

011-17 (18) (рис. 89), биологический микроскоп, вещественные доказа­тельства с люмннесцирующимн объектами, готовые флюорохромирован- цые мнкропрепараты (инфаркт миокарда, мазки спермы и др.). Иссле­дования проводятся в затемненном помещении.

Наблюдение соб­ственной люмине­сценции объекта.

Исследуемый предмет (ткани со следами ружей­ной или других видов смазок, вещественные до­казательства с пятнами, подозрительными на спер­му, и др.) облучают осве­тителем «Ультрасвет» ^[11], снабженным синим филь­тром.

венной люминесценцией в Осветитель «Ультрасвет»,

види мои части спектра,

обнаруживается свечение различной окраски и ин­тенсивности в зависимости от природы объекта (табл. 7).

Для наблюдения собственной люминесценции тканей кусочки органов фиксируются в 5—10% растворе форма­лина в течение 1—2 суток. Приготавливаются заморожен­ные или парафиновые срезы (в последнем случае перед микроскопированием парафин удаляется путем погружения препарата в ксилол на 30 минут). Препараты могут хра­ниться без покровного стекла.

Микролюминесцентное исследование флю- орохромированных препаратов в видимой части спектра, а) Приготовление препаратов тканей. При окраске флюорохромами (акридиновый оранжевый, корифосфин, берберин сульфат, аура мин 00 и др.) рабочие растворы красителей готовят в разведении 1 : 10 ООО,

Рис. 89. Люминесцентный осветитель ОИ-17 (18). Поясне­ния в тексте.

Таблица 7

Результаты люминесцентного анализа при исследовании некоторых объектов в синем свете

I : 100 000 и более.

б) Приготовление препаратов спермы. На объект иссле­дования (мазок, разволокненную ниточку, соскоб), поме­щенный на предметное стекло, одновременно наносят 2 кап­ли аурамина 00 и 1 каплю акридинового оранжевого, разве- дсчшого водой 1:10 000. Через 15 минут после нанесения флюорохромов препарат прикрывают покровным стеклом и высушивают, ие допуская кипения (для закрепления по-

17 Практикум по судебной медицине

кровного стекла края его промазывают подогретым пара­фином).

Микроскопыров анис. При работе на биологическом мик­роскопе с люминесцентным осветителем ОИ-17 (18) поря­док исследования такой: осветитель устанавливают та­ким образом, чтобы передний край его тубуса располагал­ся на расстоянии 10 см от зеркала микроскопа, и включают в сеть переменного тока (127 или 220 в) через дроссель (/); плавным поворотом ручки реостата (2) включают лампу осветителя. Опустив рукоятку держателя, направляют кор­пус осветителя так, чтобы световой поток падал на зеркало микроскопа, после чего рукоятку необходимо завернуть. Пользуясь ручками 3, 4, 5 (отражатель лампы и диафраг­мы), добиваются максимального освещения зеркала.

В держатель (6) осветителя вставляют необходимые фильтры (ФС-1, СС-5, СС-12), а на окуляр микроскопа — запирающий светофильтр ЖС-18. Препарат помещают иа передний столик, поворотом зеркала и конденсора микро­скопа устанавливают максимально равное освещение и за­тем производят фокусировку микроскопа на объект.

При инфаркте миокарда обращают внимание на желто­вато-коричневое свечение неповрежденных мышечных во­локон и зеленоватое свечение зоны инфаркта. Исследова­ние мазков спермы начинают с малого увеличения (в 10 раз), добиваясь максимального освещения объекта и вы­бирая поле зрения с достаточным количеством светящихся сперматозоидов.

Эмиссионный спектральный анализ (демонстрация). Эмиссионный спектральный анализ позвозяет открывать и определять количественное содержание элементов в любых веществах. В судебно-медицинской практике он применяет­ся: а) для определения и идентификации действующего ору­дия по элементам, обнаруженным в объекте; б) для уста­новления химического состава некоторых ядов в биологиче­ских объектах; в) для определения изменения микроэлемен­тов во внутренних органах при утоплении; г) для решения вопроса о жпворожденностн младенца. Эмиссионный спек­тральный анализ основан на том, что раскаленные газы эле­мента испускают свет, состоящий после разложения приз­мой нз отдельных линий, расположение которых в спектре строго определенно для данного элемента. Каждая спект­ральная лшшя характеризуется длиной волны, измеряемой в миллимикронах или ангстремах. Путем определения дли­ны воли устанавливают, какие элементы содержатся в ве­ществе (пробе), а путем измерения интенсивности спект­ральных линий — количественное содержание этих элемен

Рис. 90 Спектрограмма печени новорожденного ребенка.

тов. Проведение ана шза осуществляется с помощью спектрографов (в частности, отечественным прибором ПСП-22), позволяющих фотографировать спектры.

Принцип устройства спектрографа следующий: свет от раскаленных паров вещества проходит через конденсатор, насадочную линзу, узкую щель, попадает на коллнматор- ный объектив, направляющий лучи на призму параллель­ным пучком, затем проходит через трехгранную призму, разлагающую луч света на отдельные монохроматические нучкн, которые камерным объективом проецируются на фо­топластинку (рис. 90).

Для расшифровки и ориентировки спектральных линий, полученных при исследовании объектов, пользуются спект­ром железа п атласом спектральных линий.

Фотографирование в инфракрасных лучах (демонстрация).

Пособия: набор (о конвертах) фотографий объектов в инфра­красных лучах (входное отверстие огнестрельного повреждения с нало­жением копоти вокруг, входное отверстие огнестрельного повреждения с наложением порошинок вокруг, залитые кровью вещественные доказа­тельства) .

Исследование в инфракрасных лучах применяется для различения сходных по цвету, но различных по составу ве­ществ, для обнаружения невидимых или плохо видимых объектов. Использование этих лучен в основном обуслов­лено их большой проникающей способностью по сравнению с лучами видимой части спектра.

Объектами фотографирования в инфракрасных лучах могут быть: различные вещественные доказательства, за­литые кровью; лицо трупа для целей опознания (при фото­графировании в этих лучах помарки крови и трупные пятна, имеющиеся на лице и частично затрудняющие опо­знание, могут стать невидимыми); повреждения тела, фо­тографирование которых в инфракрасных лучах выявляет различные детали; текстильные ткани (одежда), которые в результате фотографирования в инфракрасных лучах получаются «просветленными», что дает возможность выя­вить не только ряд деталей (наложения), расположенных на ткани, или повреждение ее, но и структуру самой ткани (рис. 91).

Отрезок спектра, в котором возможна съемка в инфра­красных лучах, лежит в пределах от 0,7 до 1,3 и. Источни­ками инфракрасных лучей являются обычные лампы нака­ливания с температурой накала нити лампы соответствен­но 3700 и 1900°. Для фотографирования применяются камеры с обычной стеклянной оптикой. Защита фотомате­риалов при съемке от видимого излучения осуществляется с помощью красных светофильтров от КС-14 до КС-19 и инфракрасных от ИКС-1 до ИКС-3.

Для фотографирования применяются специальные фо­томатериалы, сенсибилизированные к инфракрасным лу­чам. К ним относятся фотопластинки «ннфра», характери­зующиеся максимумом чувствительности к инфракрасной зоне, н аэрофотопластники.

Непосредственная микроскопия. Непосредственная мик­роскопия позволяет выявлять детали, с учетом которых во многих случаях могут быть разрешены вопросы об исполь­зованном орудии и механизме его действия (дополнитель­ные факторы выстрела, различные включения в ране, иа- личне и характер трещин костей, надрезы п надрывы краев раны и т.

Для непосредственной микроскопии используются опе­рационный бинокулярный микроскоп (для исследования повреждений на трупе в секционном зале) и стереоскопиче­ский микроскоп МБС-1 (2) для изучения объектов вне сек­ционного зала.

Рис. 91 Огнестрельное повреждение (входное отверстие) на ткани одежды.

« — повреждение при фотографировании в инфракрасных лучах; б — повреж­дение при обычном фотографировании.

Операционный бинокулярный микроскоп (рис. 92) состоит из штатива (У) и оптической головки (2). Оптическая головка обладает увеличением более чем в 15 раз и рассчитана на значительное удаление оптической си­стемы от рассматриваемого объекта (200 мм). Существен­ней особенностью операционного микроскопа является на­личие осветителя. Прибор обеспечивает хорошее освеще­ние глубоких слоев исследуемого объекта. Освещенность в приборе равномерная и соответствует полю зрения.

Методика исследования. 1. Оптическую голов­ку (2) помешают над объектом исследования.

2. Поворотами монокуляров (в), расположенных под углом друг к другу п составляющих оптическую головку,

устанавливают требуемое расстояние в соответствии с расстановкой глаз.

Рис. 92. Операционный биноку­лярный микроскоп. Пояснсння'в тексте.

3. Наводку на резкость производят преимуществен­но движением всей головки по штативу и винтом (4), а требуемое увеличение — вращением барабанчиков

4. После этой подготовки исследуют объект при раз­личных увеличениях — в 7, 10, 23 и 34 раза.

Стереоскопический микроскоп МБС-1 (рис. 93). Методика иссле­дования.

1. Объект исследования (иссеченные раны кожи, мышцы, внутренние органы, одежда с механическими по­вреждениями) , расправлен­ный на кусочке картона или фанеры и прикрепленный к ним по краям посредством игл или кнопок, помещают на предметный столик кор­пуса (7), который освещает­ся электрической лампочкой

(2) , включенной в электро­сеть через трансформатор

(3) .

2. Поворотным отражате­лем (4) достигается па прав­ление пучка света на иссле­дуемый обьект. Для работы с естественным освещением следует пользоваться плоским зеркалом отражателя, при искусственном (электрическом) освещении — матовой сто­роной отражателя.

3. Посредством вращения окулярных трубок (5) два изображения в окулярах сводятся в одно.

4. Винтом (6) производится фокусировка иа объект.

5. Вращением барашков (7) устанавливается необходи­мое увеличение.

Схема осмотра п описания объекта

1. Наименование объекта.

2. Имеющиеся повреждения и их количество.

Рис. 93. Стереомикроскоп МБС-1.

/ — корп>с: 2 — патрон с электрической лампочкой. 3—транс­форматор. 4—поворотный отражатель: 5 —окулярные труб­ки, 6 — ьннт для фокусировки на объект; 7 — барашки

3. Форма и размеры повреждений.

4. Характер краев и концов повреждений.

5. Имеющиеся по краям повреждения посторонние на­ложения (или включения), их характер и форма располо­жения.

6. Детали повреждений в глубине.

В качестве примера приводим описание иссеченной ко­лото-резаной раны кожи: «В центре кожного лоскута раз­мером 4X3 см имеется линейная щелевидная рана длиной 1,2 см с ровными, чистыми, неосадиепными краями; один конец раны острый, другой — несколько закруглен, с осад-

пением кожи и кровоизлиянием в подкожножнровую клет­чатку; каких-либо включений в глубине раны нет».

Контактно-диффузный метод выявления металлов. Ме­тод оттисков (отпечатков) основан на растворении метал­лов под воздействием растворителей и переносе их механи­ческим путем на бумагу с последующим проявлением ре­активом, дающим цветное окрашивание (рис. 94).

Приборы и пособия: операционный стереомнкроскоп, стерео­микроскоп МБС-1, отфикснрованная фотобумага, пресс, эластический Спит, фильтровальная бумага, банка с водой.

Реактивы: насыщенный раствор рубеанововолородной кислоты, Ь—10% раствор аммиака, раствор а-нитрозоф-иафтола. 20—23% рас- івор уксусной кислоты, дистиллированная вода, раствор роднзоната калия (или натрия); 0,01% N раствор железисто-синеродистого калия, смесь 26% соляной кислоты и 96 ₉ метилового спирта, хроматографи­ческая бумага.

Определение меди и никеля насыщенным раствором рубеанововолородной кислоты. Отфпксированмую сухую фотографическую бумагу пропи­тывают 8—10% раствором аммиака и прижимают к объекту на 5 минут (прессом с резиновой прокладкой на изолиро­ванный объект или резиновым, эластическим бинтом к по­вреждению на трупе), после чего накладывают на нее фильтровальную бумагу, пропитанную насыщенным рас­твором рубеанововолородной кислоты. Через 1—2 минуты фильтровальную бумагу снимают, а отпечаток промывают в банке с водой. При наличии в объекте меди на отпечатке появляется темно-зеленое окрашивание, интенсивность ко­торого зависит от концентрации металла. Кроме этого, вы­является топографическое расположение металла на пред­мете (рис. 94, а). При наличии на отпечатке никеля появ­ляется сине-фиолетовое окрашивание (рис. 94, б, на вкл. между стр. 128—129).

Определение железа раствором а-нитро- з о-р-н а ф т о л а. Отфикснрованную фотографическую бу­магу, пропитанную 20—25% раствором уксусной кислоты (влажную), прижимают к объекту на 4—5 минут. Затем ее смачивают раствором а-нитрозо-р-иафтола, после чего про­мывают дистиллированной водой. При наличии в объекте двухвалентного железа на отпечатке появляется зеленое окрашивание (рис. 94, б), трехвалентного железа — буро­черное, при наличии меди — кирпично-красное.

Определение железа, меди и н и к е л я 0,01 % N раствором же лез ист о-с и не род ист ого калия.

Хроматографическую бумагу (ватман 1) смачивают смесыо 26% соляной кислоты и 96% метилового спирта, приклады­вают к предполагаемому месту отложения металлов (по указанному выше методу), затем высушивают и обрызги­вают 0,01% раствором железисто-синеродистого калия. Же­лезо дает голубовато-зеленое окрашивание, медь — свет­ло-коричневое (в больших количествах — оранжевое), ни­кель— синее, после обработки парами аммиака.

Определение свинца раствором р о д и з о- н а т а к а л и я или натр и я. Отфиксированную фото­графическую бумагу обрабатывают так же, как при опре­делении железа раствором а-нитрозо-р-нафтола, но в каче­стве проявителя применяют свежеприготовленный раствор родизоната калия или натрия. При наличии свинца на отпе­чатке появляется красно-фиолетовое окрашивание.

Выявление железа в иссеченных ранах с помощью цвет­ных химических реакций. В судебно-медицинской практике цветные химические реакции используются при экспертизе огнестрельных повреждений, при исследовании электротрав­мы и ранений, нанесенных острыми орудиями (отличие ранения, нанесенного ножом, от ранения, причиненного стеклом), при разрешении вопросов о свойствах орудия и механизме его действия и др.

Приборы н по се б и и: стереомикроскоп МБС-1, стеклянная банка.

Реактивы: 2% раствор желтой кровяной соли, 2% раствор со­ляной кислоты, дистиллированная вода, насыщенный раствор сернисто­го аммония, 20% раствор красной кровяной солн, 1% раствор соляной кислоты.

.Методика исследования. Иссеченную рану с окружающими мягкими тканями помещают в банку со све­жеприготовленной смесью равных частей 2% раствора жел­той кровяной соли и 2% раствором соляной кислоты, затем извлеченную рану промывают дистиллированной водой. Сое­динения железа окрашиваются в синий или сине-зеленова- тый цвет (образование берлинской лазури).

Реакция Т и р м а и а на солн окиси и заки­си железа. Иссеченную рану помещают на 2 часа’в на­сыщенный раствор сернистого аммония, затем промывают струей дистиллированной воды, смачивают свежеприготов­ленной смесью равных частей 20% раствора красной кровя­ной солн и 1 % раствора соляной кислоты и снова промыва­ют водой. Солн железа окрашиваются в синий цвет (обра­зование турнбулевой сини).

Препараты рекомендуется рассматривать под стерео- микроскопом с различным увеличением. Это дает возмож­ность уточнить расположение характерного окрашивания по краям повреждении.

Биологические методы исследования

Исследование спермы методом электрофореза на бумаге (демонстрация).

Приборы и пособия: аппарат для электрофореза, фотогра­фии фореграмм.

Обнаружение спермы методом электрофореза на бумаге основано на различиях белкового состава спермы и других биологических жидкостей. Нормальная сперма содержит до 16% альбуминов п 55.4 }о белков, соответствующих по под­вижности бета-глобулинам, в то время как из ore м агглюти­нирующая сыворотка человека содержит 60—64% альбуми­нов и 36—40% глобулинов. Метод позволяет исследовать как жидкую сперму, так н вытяжку из семенного пятна, дает ка­чественную п относительную количественную оценку белко­вого состава объекта н требует минимального его количе­ства (0,02 мл жидкости или вытяжки из пятна).

Исследование проводят с помощью аппарата для элек­трофореза типа ЭМИБ (Киев) на фильтровальной бумаге ВФ-1 толщиной 0.16 мм¹. Бумагу смачивают буферным раствором с pH 8,6 (ионная сила 0,06) и укладывают от­дельными полосами или целым листом на горизонтальную пластину аппарата. На бумаге отмечают линию старта, на которую одновременно наносят по 0,02 мл исследуемой жидкой спермы или же вытяжки из семенного пятна Элек­трофорез ведут в течение 15—22 часов при силе тока 1—3 ма и напряжении 150—180 в ². Под воздействием электрического ноля белковые частицы исследуемых веществ в зависи­мости от своих поверхностных свойств н заряда отклады­ваются на различном расстоянии от линии старта, образуя отдельные фракции После выключения аппарата фильтро­вальную бумагу для фиксации белковых фракции помеща­ют в сушильный шкаф при температуре 105° на 20 минут. Затем бумагу окрашивают кислотным енне-черным красні

¹ .Можно использовать бумагу и других типов.

² Электрофорез можег производиться и при других режимах, в за­висимости от чего можно получить от 3 до 6 фракций спермы.

телем в течение 15 минут. Избыток краски удаляют 2—4% раствором уксусной кислоты, после чего фореграмму отмы­вают в течение 6—7 часов до полного обесцвечивания бума­ги, не содержащей белка. При расшифровке электрофоре- граммы применяются следующие обозначения фракций.

Для С 111 в о р о т к и Для спермы

у — гамма-глобулин 0 — фракция нуль

р—бета-глобулин 1—фракция первая

«і — альфа-1-глобулин 2 — фракция вторая

ап — альфа-2-глобуліш 3 — фракция третья

А — альбумин 4 — фракция четвертая

При сопоставлении электрофореграммы спермы и сыво­ротки уже визуально усматриваются значительные разли­чия их фракций, особенно в отношении альбуминов. Наибо­лее демонстративно эти различия выявляются при количест­венном определении белка во фракции. В этих целях применяется метод фотоэлектроколоримстрироваиия окра­шенных белковых фракций фореграммы после предвари­тельного элюирования красителя с фореграммы. Электро- фореграмму разрезают на полоски шириной 0,5 см и поме­щают в пробирки с 5 мл 0,1 н. раствора едкого натра. Через час окрашенный раствор едкого натра помещают в кювету ФЭК размером 5,055 мм и при красном светофильтре оп­ределяют величину экстинкцни. По показателям экстпнкшш составляют гаусовую кривую белковых фракции исследу­емых объектов. При этом сумму величии экстннкцнй отдель­ных фракций принимают за 100% и затем вычисляют, какой процент по отношению к ней составляет экстннкция каждой фракции.

Определение пола по пятнам крови (демонстрация).

Приборы и пособия: биологический микроскоп, приготов­

ленные микропрепарагы крови.

. Метод основан иа половых различиях в строении ядра сегментоядсриых лейкоцитов крови.

Методика и с с л е д о в а и и я: соскоб из пятна на­носят на предметное стекло, равномерно распределяя на площади в I см². К соскобу добавляют 1 каплю 10% рас­твора уксусной кислоты. Через минуту избыток жидкости осторожно удаляют фильтровальной бумагой. После под­сыхания препарат фиксируют метиловым спиртом и окра­шивают по Романовскому — Булуа. Для определения пола необходимо изучить не менее 250—500 нейтрофилов, учи­тывая следующие разновидности ядер Пых отростков: а) ба­рабанные палочки (рис. 95. а), б) узелки (рис. 95, б), в) маленькие дубинки (рис. 95, б), г) палочки (рис. 95, г).

Вопрос о половой принадлежности решается па основа­нии подсчета разновидностей ядериых отростков, встре­чающихся с различной частотой у лнц женского и муж­ского пола (табл. 8).

Рис 95. Разновидности отростков ядер нейтрофилов

Частота выраженности различных отростков ядер нейтрофильных лейкоцитов у лиц обоего пола в среднем на 500 нейтрофилов (по А. В Капустину)

о —бараблнные палочки; б — узелки; в — маленькие дубники; с — палочки.

Таблица 8

Установление срока беременности и родов по морфоло­гическому составу секрета молочных желез (демонстрация).

Приборы п пособия: биологический микроскоп, приготовлен­ные мазки секрета молочных желез.

На основании морфологического состава секрета мо­лочных желез можно установить наличие беременности, ее срок, определить бывшую беременность, роды, а также прекращение родильницей кормления ребенка.

Методика исследования:

Несколько капель секрета молочных желез помещают на обезжиренные предметные стекла и изготовляют мазки. Высохшие на воздухе мазки фиксируют в метиловом спир­те в течение 5—10 минут, после этого окрашивают в течение 3 минут краской Май-Грюнвальда (20—40 капель), затем па мазки наносят ровное количество дистиллированной воды и продолжают окрашивать в течение 4 минут. После этого краску сливают, не промывая водой, и красят азур- эознном по Романовскому (на 30 капель краски 10 мл ди­стиллированной воды) в течение 15 минут. Далее краску тщательно смывают дистиллированной водой, мазки высу­шивают и заключают в канадский бальзам.

Просмотреть необходимо не менее двух мазков секрета из каждой исследуемой молочной железы. При 2—3-месяч- ной беременности преобладают эпителиальные пенистые клетки, в небольшом количестве содержатся свободные шарики жира, отдельные сегмеитоядерные лейкоциты, мел­кие эпителиальные клетки и свободные ядра.

С увеличением срока беременности возрастает коли­чество жировых включений в секрете. При 5—6-месячной беременности увеличивается количество разнообразных эпителиальных клеток. Среди них встречаются единичные гигантские базофильиые клетки. К концу беременности базофилия всех клеток возрастает, во многих клетках обна­руживается по нескольку ядер, количество жировых шари­ков увеличивается, среди них видны обломки разрушаю­щихся ядер.

В первые 3—7 дней после начала кормления ребенка в секрете молочных желез находятся небольшое количество эпителиальных клеток, лейкоцитов, голые ядра и их об­ломки. В последующие дни обломки ядер и другие морфо­логические субстанции исчезают и в молоке остаются толь­ко шарики жира. К моменту окончания кормления ребенка количество шариков в молоке значительно уменьшается.

Исследование наложений на предполагаемом орудии травмы (демонстрация).

Приборы и пособия: биологический чнкроскоп, приготовлен­ные мазки соскоба.

На орудии, которым совершено преступление, в боль- пшисіве случаев мог>т быть выявлены различные наложе­ния в виде крови, волос, клеток внутренних органов. Об­наружение и исследование этих следов может явиться ре­шающим аргументом при идентификации орудия травмы.

С исследуемого предмета делают соскоб, который зали­вают в пробирке дистиллированной водой и подкисляют соляной кислотой. После растворения соскоба жидкость центрифугируют в течение 30 минут. Из полученного осадка на тщательно обезжиренных стеклах готовят мазки, кото­рые после подсыхания фиксируют в метиловом спирте (3 минуты) и окрашивают гематоксилин-эозином или ннк- рофуксином по вам Гнзону. В препаратах даже через нес­колько месяцев после использования орудия могут быть выявлены клеточные элементы печени, почек, легких, КОС- 111, поперечнополосатых мышц, мозга. По данным ряда авторов, обнаруженные клетки могут быть исследованы на предмет определения их половой принадлежности по половому хроматину.