2.8. Разработка и валидация экспериментальной модели острого риносинусита
Известно, что острый риносинусит возникает в результате воздействия на слизистую оболочку носовой полости вирусной или бактериальной инфекции.
На фоне вирусной инфекции и воспалительного процесса в полости носа возникает отек слизистой оболочки полости носа и остиомеатального комплекса (система очень узких пространств, куда открываются околоносовые пазухи).
В связи с указанными изменениями давление в околоносовых пазухах становится ниже атмосферного, что вызывает усиление транссудации в пазухи с параллельно существующим нарушением эвакуации слизи (транссудата) обусловленным угнетением мукоцилиарного транспорта вплоть до его полной остановки. Все это делает возможным вторичную бактериальную инвазию. Микробная флоранаходит для себя благоприятную среду обитания в виде серозного, слизистосерозного и слизистого отделяемого, начинает активно размножаться, а замедление движения мерцательного эпителия продлевает контакт патогенных микробов с клеткой. Вследствие указанных процессов асептическое воспаление переходит в септическое гнойное воспаление, и в клинической картине начинают доминировать симптомы инфекционного воспаления околоносовых пазух.
Таким образом, первичным проявлением риносинусита при ОРВИ в клинике является асептическое воспаление.
Адекватной модели, по этиологии и патогенезу близкой к естественному пути заражения и распространения возбудителя, без предварительного раздражения или повреждения тканей, не было создано, что открывает широкие возможности для экспериментальных исследований (Чистюхина И.О., 1998)
На сегодняшний день в доступной литературе наиболее широко представлено описание экспериментальных риносинуситов аллергической природы (Yamasaki M. et al., 2002; Fukuda S. et al., 2003; KleinJan A., 2006; Wang H. et al., 2007; Jung H.W. et al., 2013).
Также существует множество экспериментальных моделей воспалительных заболеваний бронхолегочной системы, индуцируемых данными провоспалительными агентами (Dugo L.
et al., 2004; Mochizuki M. et al., 2005; Ceccarelli M. et al., 2009; Rossi A. et al., 2010; Herber-Jonat S. et al., 2011; Patial S. et al., 2011).При этом в современной доступной литературе отсутствует описание экспериментальной модели риносинусита с помощью какого-либо провоспалительного агента.
Для оценки экспериментального ринита используется большое количество методов и показателей, в зависимости от целей и задач исследования:
• Оценка клеточного состава смыва из носовой полости (Yamasaki
M. et al., 2002);
• Гистологическая оценка тканей носовых ходов (Yamasaki M. et al., 2002; KleinJan A. et al., 2006; Jung H.W. et al., 2013). Оценка количества бокаловидных клеток (Yamasaki M. et al. 2002);
• Измерение удельного сопротивления дыхательных путей (плетизмограф) (Yamasaki M. et al., 2002);
• Иммуногистохимический анализ слизистой оболочки носа (KleinJan A. et al., 2006; Jung H.W. et al., 2013).
При моделировании острого риносинусита необходимо учитывать, что нормальная анатомия околоносовых пазух белых крыс в значительной степени отличается от таковой у человека (рисунок 10). Пазухи крысы довольно обширны, что создает благоприятные условия для моделирования комбинированной патологии - риносинусит.
а б
Рисунок 10 - Анатомическое строение околоносовых пазух крыс (а) и человека (б)
Учитывая приведенные выше сведения о значимой роли асептического воспаления при инфекционных ринитах, целью данной работы явилась разработка универсальной экспериментальной модели асептического воспаления носовых ходов и синусов.
С целью разработки фармакологической модели острого риносинусита было протестировано 3 провоспалительных агента, вызывающих воспалительную
реакцию в тканях: ЛПС в дозе 0,1 мг/кг водный раствор, каррагенин в дозе 0,8 мг/кг и формалин в дозе 12 мг/кг водный раствор.
Выбор доз провоспалительных агентов
В данном случае выбор доз для ЛПС и каррагенина также был обусловлен литературными данными, ЛПС в дозе 100 мкг/кг (Тюренков И.Н., Самотруева Н.Н., 2011; Samotrueva M.A.
et al., 2011); доза Х-каррагенина после пересчета на 1 кг массы тела животного с учетом объема введения 40 мкл (20 мкл в каждый носовой ход) составила 1,6 мг/кг (Posadas I., 2004; Xu Zh.et al., 2012).Доза формалина была определена экспериментальным путем. При введении более высокой дозы формалина (16 мг/кг) наблюдались некротические изменения тканей носовых ходов, а при использовании более низкой дозы (8 мг/кг) у животных развивалась недостаточно выраженная картина острого воспаления.
Провоспалительные агенты вводили непосредственно в носовые ходы крыс путем дозированного закапывания с использованием механических дозаторов с пластиковыми наконечниками.
Через 7 дней животных эвтаназировали.
Также представлялось интересным сравнить реакцию на поступление провоспалительного агента самцов и самок крыс. Существуют литературные данные о том, что использование самок является предпочтительным выбором, т.к. у самок крыс наблюдается более выраженный воспалительный ответ в ответ на введение повреждающих агентов (Cook C.D., Nikerson M.D., 2005; Lariviere W.R. et al., 2006).
Готовые растворы провоспалительных агентов закапывали в каждый носовой ход (рисунок 11).
Дизайн исследования по разработке экспериментальной модели острого риносинусита представлен в таблице 10.
Рисунок 11 - Интраназальное введение раствора крысе с помощью дозатора
Таблица 10
Дизайн эксперимента по разработке экспериментальной модели острого
риносинусита
| Группа | Количество животных | Пол | Вес, г M±m |
| Группа 1 Интактные | 10 | Самцы | 200±10 |
| 10 | самки | 195±10 | |
| Группа 2 Индукция патологии | 10 | Самцы | 206±11 |
| ЛПС 0,1 мг/кг | 10 | самки | 187±9 |
| Группа 3 Индукция патологии | 10 | Самцы | 198±9 |
| каррагенин 1,6 мг/кг | 10 | самки | 188±12 |
| Группа 4 Индукция патологии | 10 | Самцы | 211±12 |
| формалин 12 мг/кг | 10 | самки | 182±4 |
Извлечение носовых ходов крыс
После эвтаназии животных декапитировали большими ножницами.
Отрезали нижнюю челюсть, ведя хирургические ножницы в ротовую полость над языком (рисунок 12 - 16);Осторожно, избегая повреждения рук верхними резцами, производили разрез за глазами, отделяя тем самым препарат верхней челюсти (рисунок 12 - 15);
Рисунок 12 - Отделение
нижней челюсти
Рисунок 13 - Отделение
нижней челюсти
Рисунок 14 - Разрез за глазами
Рисунок 15 - Отделение препарата верхней челюсти
С полученного препарата верхней челюсти с помощью хирургических ножниц убирали кожу и мышцы, оставляя целостными костные структуры
носовых ходов и синусов (рисунок 16 - 18).
Рисунок 16 - Отделение кожи и мышц
Рисунок 17 - Препарат верхней
Рисунок 18 - Препарат верхней челюсти
челюсти после отделения кожи и мышц после отделения кожи и мышц
Для оценки экспериментальной модели исследовали следующие показатели:
• морфологическое исследование слизистой оболочки и подслизистого слоя обоих носовых ходов (дыхательная и обонятельная область) экспериментальных животных (см. п. 2. 14.);
Для проверки сходимости показателей, характеризующих развитие экспериментальной патологии, было проведено три серии экспериментов. Эксперименты проводились на самках линии Вистар в различные сезоны (весна, лето, осень):
Первая серия экспериментов была проведена с 15.04.10 по 21.04.10
Вторая серия экспериментов была проведена с 17.07.10 по 23.07.10
Третья серия экспериментов была проведена с 01.10.10 по 07.10.10
Дизайн исследования по валидации экспериментальной модели острого риносинусита на самках крыс линии Вистар представлен в таблице 11.
Таблица 11
Дизайн исследования по валидации экспериментальной модели острого риносинусита на самках крыс линии Вистар, M±m, n=10
| Группа | Вес, г | ||
| Серия 1 | Серия 2 | Серия 3 | |
| Группа 1 Интактные | 199±9 | 207±7 | 206±6 |
| Группа 2 Индукция патологии | 200±9 | 199±9 | 198±10 |
Для валидации экспериментальной модели исследовали следующие показатели:
• морфологическое исследование слизистой оболочки и подслизистого слоя обоих носовых ходов (дыхательная и обонятельная область) экспериментальных животных (см. п. 2.14.);
2.9.
Еще по теме 2.8. Разработка и валидация экспериментальной модели острого риносинусита:
- Разработка и валидация экспериментальной модели острого шейного лимфаденита
- Оценка эффективности препарата фрешнос в сравнении с виброцилом и аквамарисом на экспериментальной модели острого риносинусита
- 2.7. Оценка эффективности КЛС-04 в сравнении с тантум верде, диклофенаком и дексаметазоном на экспериментальной модели острого шейного лимфаденита
- Экспериментальные модели паркинсонизма
- Экспериментальные модели.
- Экспериментальные модели гиперпролактинемии
- 1.3. Экспериментальные модели заболеваний верхних дыхательных путей
- Экспериментальные модели. Острый (диффузный) гломерулонефрит.
- Экспериментальные модели.
- Разработка математической электрофизической модели и требований к граничным условиям
- 2.3 Разработка математической модели оценки уровня психоэмоционального напряжения
- Экспериментальные модели воспаления
- Схемы экспериментальных моделей использованные в биологических экспериментах
- Разработка интеллектуальных агентов и моделей прогнозирования возникновения и развития ишемии сердца
- Состояние иммунного статуса экспериментальных животных с моделью хронического тубулоинтерстициального нефрита
- Теоретические и экспериментальные модели прогнозирования профессиональной пригодности работников экстремальных профессий