<<
>>

Заключение

В настоящее время участие а-синуклеина в патогенезе БП подтверждается в ряде исследований. Разработка диагностических тестов БП основанных на оценке

Рис.

5. Уровень олигомерных форм а-синуклеина в плазме крови в группе пациентов с БГ (БГ), другими ЛБН (ЛБН), пациентов с БП с мутациями в генах ЛБН (GBA, CLN3) (БП(ЛБН)) и контроле Линиями указаны медианы в каждой исследуемой группе

уровня а-синуклеина в различных тканях человека остается, однако, задачей нерешенной. Отсутствие такихтестов обусловлено, в первую очередь, отсутствием ясного понимания того, какие агрегаты а-синуклеина обладают нейротоксичностью, а также сложностью разработки методов специфичного выявления олигомерных нейротоксичныхформ а-синуклеина и их дифференцировки от физиологически активных тетрамеров белка. Анализ литературных данных, а также результаты собственных исследований предполагают, что оценка уровня немодифицированного как общего, так и олигомерного а-синуклеина крови сегодня не может быть использована в качестве прогностического маркера БП. Результаты остаются противоречивыми даже при учете фактора гемолиза и обследовании групп пациентов, не принимающих препараты Л-ДОФА. Альтернативно, перспективным представляется измерение модифицированных форм а-синуклеина в крови, а также оценка а-синуклеина в клеточных фракциях крови, полученных путем клеточного сортин- га, в частности в CD45+ клеточных лизатах. Формирование агрегатов а-синуклеина при других заболеваниях человека указывает на необходимость адекватной оценки специфичности предлагаемых маркеров. Наиболее прогностически значимым может стать развитие методов нейровизуализации, способных выявлять накопление а-синуклеина в отделах мозга.

Литература

Иллариошкин С.Н. Конформационные болезни мозга. М.: Янус-К, 2003.

Литвиненко И.В., ОдинакМ.М., Сологуб О.С. и др. Гипергомоцистеинемия при болезни Паркинсона - новый вариант осложнений проводимой терапии или специфический биохимический маркер заболевания? Анналы клинической и экспериментальной неврологии/ 2008/ № 2. С. 13-17.

Пчелина С.Н. Альфа-синуклеин как биомаркер болезни Паркинсона. Анналы клинической и экспериментальной неврологии. 2011. Т 4. С. 46-51.

Пчелина С.Н., Емельянов А.К., Якимовский А.Ф. и др. Сниженный уровень альфа-синуклеина в лейкоцитах периферической крови у пациентов с LRRK2-ассоциированной болезнью Паркинсона, Бюлл. экспер. биол. и мед. 2010. Т 150. № 12. C. 619-621.

Aerts M.B., Esselink R.A., Abdo W.F., Bloem B.R., Verbeek M.M. CSF а-synuclein does not differentiate between parkinsonian disorders. Neurobiol Aging. 2012. Vol. 33. № 2. P. 430.

Anderson J., Walker D.E., Goldstein J.M. et al. Phosphorylation of Ser-129 is the dominant pathological modification of alpha-synuclein in familial and sporadic Lewy body disease // J. Biol. Chem. 2006. Vol. 281. C. 29739-29752.

Andoskin PA., Emelyanov A.K. Yakimovsky A.F. Timofeeva A.A., Pchelina S.N. Oligomeric alpha-synuclein levels in blood plasma in LRRK2 - linked Parkinson’s disease // European J. Human Genetics. 2013. Vol. 21. Suppel. 2. P. 513.

Argyriou A, Dermentzaki G, Papasilekas T et al. Increased dimerization of alpha-synuclein in erythrocytes in Gaucher disease and aging // Neurosci. Lett. 2012. Vol. 528. № 2. P. 205-209.

Barbour R., Kling K., Anderson J.P. et al. Red blood cells are the major source of alpha-synuclein in blood. Neurodegener Dis. 2008. № 5. P. 55-59.

Bartels T., Choi J.G., Selkoe D.J. а-Synuclein occurs physiologically as a helically folded tetramer that resists aggregation. Nature. 2011. Vol. 477. № 7362. P. 107-110.

Beyer K. Alpha-synuclein structure, posttranslational modification and alternative splicing as aggregation enhancers // Acta Neuropathol. 2006. Vol. 112. № 3. P. 237-251.

Bisaglia M., Mammi S., Bubacco L.

Structural insights on physiological functions and pathological effects of alpha-synuclein // FASEB J. 2009. Vol. 23. P. 329-340.

BisagliaM., GreggioE., DraganM.,etal. a-Synuclein overexpression increases dopamine toxicity in BE(2)- M17 // Cells BMC Neurosci. 2010. Vol. 11. P. 41.

Brighina L., Prigione A., Begni B. et al. Lymphomonocyte alpha-synuclein levels in aging and in Parkinson disease // Neurobiol. Aging. 2010. Vol. 31. P. 884-885.

BrugginkK.A., KuiperijH.B., Ekholm-Pettersson F., VerbeekM.M. Detection of elevated levels of a-synuclein oligomers in CSF from patients with Parkinson disease // Neurology. 2011. T. 2. Vol. 77. № 5. P. 51.

Cabin D.E., Shimazu K., Murphy D. et al. Synaptic vesicle depletion correlates with attenuated synaptic responses to prolonged repetitive stimulation in mice lacking alpha-synuclein // J. Neurosci. 2002. Vol. 22. P. 8797-8807.

Campbell T.N., Choy F.Y. Gaucher disease and the synucleinopathies: refinding the relationship // Orphanet. J. Rare Dis. 2012. Vol. 7. P. 12.

Carotini B., Tanda G., Colosimo C. Reduced dopamine in peripheral blood lymphocytes in Parkinson’s disease // NeuroReport. 1999. Vol. 10. P. 2907-2920.

Conway K.A., Harper J.D., Lansbury P.T. Accelerated in vitro fibril formation by a mutant alpha-synuclein linked to early-onset Parkinson disease // Nat. Med. 1998. Vol. 4. P. 1318-1320.

Cookson M.R., van derBrugM. Cell systems and the toxic mechanism(s) of alpha-synuclein // Exp. Neurol. 2008. Vol. 209. P. 5-11.

Davidson W.S., Jonas A.., Clayton D.F., George J.M. Stabilization of alpha-synuclein secondary structure upon binding to synthetic membranes // J. Biol. Chem. 1998. Vol. 273. P. 9443-9449.

Duran R., Barrero F.J., Morales B. et al. Plasma alpha-synuclein in patients with Parkinson’s disease with and without treatment // Mov. Disord. 2010. Vol. 25. P. 489-493.

Elbaz A., Ross O.A., Ioannidis J.P., Soto-Ortolaza A.I., Moisan F., Aasly J. et al. Independent and joint effects of the MAPT and SNCA genes in Parkinson disease // Ann.

Neurol. 2011. Vo. 69. № 5. P. 778-792.

Ellis C.E., Schwartzberg P.L., Grider T.L., Fink D.W., Nussbaum R.L. Alpha-synuclein is phosphorilated by members of the Src family of protein-tyrosine kinases // J. Biol. Chem. 2001. Vol. 276. P. 3879-3884.

Emelyanov A., Andoskin P., Yakimovskii A. et al. SNCA, LRRK2, MAPT polymorphisms and Parkinson’s disease in Russia // Parkinsonism Relat Disord. 2013. Vol. 19. № 11. P. 1064-1065.

Emelyanov A. K., Andoskin P., Yakimovskii A. et al. The CD45+ blood cells alpha-synuclein level in Parkinson’s disease // J. Human Genetics. 2014. Vol. 22. № 1. P. 193.

FeanyM.B., Bender W.W. A drosophila model of Parkinson’s disease // Nature. 2000. Vol. 404. P. 394-398.

Foulds P.G., Mitchell J.D., Parker A. et al. Phosphorylated a-synuclein can be detected in blood plasma and is potentially a useful biomarker for Parkinson's disease // FASEB J. 2011. Vol. 25. № 12. P. 4127-4137.

Foulds P.G.., Diggle P., Mitchell D. et al. A longitudinal study on alpha-synuclein in blood plasma as a biomarker for Parkinson;s disease // Scientific reports. 2013. Vol. 3. P. 2540. DOI:10.1038.

Fuchs J., TichopadA., Golub Y. et al. Genetic variability in the SNCA gene influences alpha-synuclein levels in the blood and brain // FASEB J. 2008. Vol. 22. P. 1327-1334.

Fujiwara H., Hasegawa M., Dohmae N. et al. Alpha-Synuclein is phosphorylated in synucleinopathy lesions // Nat. Cell Biol. 2002. Vol. 4. № 2. P. 160-164.

Galvin J.E., Giasson B., Hurtig HI., Lee VM., Trojanowski J.Q. Neurodegeneration with brain iron accumulation, type 1 is characterized by alpha-, beta-, and gamma-synuclein neuropathology // Am. J. Pathol. 2000. Vol. 157. № 2. P. 361-368.

Gan-Or Z., Ozelius L.J., Bar-Shira A. et al. The p.L302P mutation in the lysosomal enzyme gene SMPD1 is a risk factor for Parkinson’s disease // Neurology. 2013. Vol. 80. № 17. P. 1606-1610.

Giasson B.I., Murray I.V., Trojanowski J.Q., Lee VM. A hydrophobic stretch of 12 amino acid residues in the middle of alpha-synuclein is essential for filament assembly // J.

Biol. Chem. 2001. Vol. 276. P. 2380-2386.

Gorostidi A., Bergareche A., Ruiz-Martinez J. et al. Alpha-synuclein levels in blood plasma from LRRK2 mutation carriers // PLoS One. 2012. Vol. 7. № 12. P. e52312.

Greggio E., Bisaglia M., Civiero L., Bubacco L. Leucine-rich repeat kinase 2 and alpha-synuclein: intersecting pathways in the pathogenesis of Parkinson’s disease? // Mol. Neurodegener. 2011. Vol. 6. P. 6.

Greten-Harrison B., Polydoro M., Morimoto-Tomita M. et al. aPy-Synuclein triple knockout mice reveal age-dependent neuronal dysfunction // PNAS. 2010. Vol. 107. P. 19573-19578.

Hong Z., Shi M., Chung K.A. et al. DJ-1 and alpha-synuclein in human cerebrospinal fluid as biomarkers of Parkinson’s disease // Brain. 2010. Vol. 133. P. 713-726.

Ibanez P., Lesage S., Janin S. et al. Alpha-synuclein gene rearrangements in dominantly inherited parkinsonism: frequency, phenotype, and mechanisms // Arch. Neurol. 2009. Vol. 66. P. 102-108.

Ischiropoulos H. Oxidative modifications of alpha-synuclein. Parkinson’s disease: the life cycle of the dopamine // Neuron. 2003. Vol. 991. P. 93-100.

Kikuchi A., Takeda A., Okamura N. et al. In vivo visualization of alpha-synuclein deposition by carbon-11- labelled 2-[2-(2-dimethylaminothiazol-5-yl)ethenyl]-6-[2-(fluoro)ethoxy]benzoxazole positron emission tomography in multiple system atrophy // Brain. 2010. Vol. 133. Pt 6. P. 1772-1778.

Kim S., Seo J.H., Suh Y.H. Alha-synuclein, Parkinson’s disease, and Alzheimer’s disease, parkinsonism // Relat. Disord. 2004. Vol. 10. P. S9-13.

Kovacs G.G., Wagner U., Dumont B. et al. An antibody with high reactivity for disease-associated a-synuclein reveals extensive brain pathology // Acta. Neuropathol. 2012. Vol. 124. № 1. P. 37-50.

Kruger R., Kuhn W., Muller T. et al. Ala30Pro mutation in the gene encoding alphasynuclein in Parkinson’s disease.// Nat. Genet. 1998. Vol. 18. № 2. P. 106-108.

Lee FJS, Liu F., Pristupa Z.B., Niznik H.B. Direct binding and functional coupling of alpha-synuclein to the dopamine transporters accelerate dopamine-induced apoptosis.

Faseb J. 2001; 15:916-926.

Lee P.H., Lee G., Park H.J. et al. The plasma alpha-synuclein levels in patients with Parkinson’s disease and multiple system atrophy // J. Neural. Transm. 2006. Vol. 13. P. 1435-1439.

Lesage S., Anheim M., Letournel F. et al. The French Parkinson’s Disease Genetics (PDG) Study Group. G51D a-synuclein mutation causes a novel parkinsonian-pyramidal syndrome // Ann. Neurol. 2013. doi: 10.1002/ana.23894. [Epub ahead of print].

Li Q.X., Mok S.S., Laughton K.M. et al.Plasma alpha-synuclein is decreased in subjects with Parkinson’s disease // Exp. Neurol. 2007. Vol. 204. P. 583-588.

Lill C.M., Roehr J.T., McQueen M.B. et al. Comprehensive research synopsis and systematic meta-analyses in Parkinson’s disease genetics: The PDGene database // PLoS Genet. 2012. Vol. 8. № 3. P. e1002548.

LukK.C., Song C., O’BrienP. etal.Exogenous alpha-synuclein fibrils seed the formation of Lewy body-like intracellular inclusions in cultured cells // PNAS. 2009. Vol. 106. P. 20051-20056.

Malek N., Swallow D., Grosset K.A. et al. Grosset Alpha-synuclein in peripheral tissues and body fluids as a biomarker for Parkinson’s disease - a systematic review // Acta. Neurol. Scandinavica. 2014. Vol. 130. № 2. P. 59-72.

Maroteaux L., Campanelli J.T., Scheller R.H. Synuclein - a neuron-specific protein localized to the nucleus and presynaptic nerve-terminal // J. Neurosci. 1988. Vol. 8. P. 2804-2815.

Masliah E., Rockenstein E., Veinbergs I. et al. Dopaminergic loss and inclusion body formation in alpha- synuclein mice: implications for neurodegenerative disorders // Science. 2000. Vol. 287. P. 1265-1269.

Mazzulli J.R., Xu Y.H., Sun Y. et al. Gaucher disease glucocerebrosidase and a-synuclein form a bidirectional pathogenic loop in synucleinopathies // Cell. 2011. Vol. 146. № 1. P. 37-52.

MichellA.W., LuheshiL.M., BarkerR.A. Skin and platelet alpha-synuclein as peripheral biomarkers of Parkinson’s disease // Neurosci. Lett. 2005. Vol. 381. P. 294-298.

Miller D.W., Hague S.M., Clarimon J. et al. Alpha-synuclein in blood and brain from familial Parkinson disease with SNCA locus triplication // Neurology. 2004. Vol. 62. P. 1835-1838.

Mollenhauer B., Cullen V., Kahn I. et al. Direct quantification of CSF alpha-synuclein by ELISA and first cross-sectional study in patients with neurodegeneration // Exp. Neurol. 2008. Vol. 213. P. 315-325.

Nemani VM., Lu W., Berge V et al. Increased expression of alpha-synuclein reduces neurotransmitter release by inhibiting synaptic vesicle reclustering after endocytosis // Neuron. 2010. Vol. 65. P. 66-79.

Nishioka K., Hayashi S., Farrer M.J. et al. Clinical heterogeneity of alpha-synuclein gene duplication in Parkinson’s disease // Ann. Neurol. 2006. Vol. 59. P. 298-309.

Norris E.H., Giasson B.I., Ischiropoulos H., Lee VM.Y. Effects of oxidative and nitrative challenges on alpha-synuclein fibrillogenesis involve distinct mechanisms of protein modifications // J. Biol. Chem.

2003. Vol. 278. P. 27230-27240.

Olteanu A., Pielak G.J. Peroxidative aggregation of alpha-synuclein requires tyrosines // Protein Science.

2004. Vol. 13. P. 2852-2856.

Paleologou K.E., Oueslati A., Shakked G. et al. Phosphorylation at S87 is enhanced in synucleinopathies, inhibits alpha-synuclein oligomerization, and influences synuclein-membrane interactions // J. Neurosci. 2010. Vol. 30. P. 3184-3198.

Park M.J., Cheon S.M., Bae H.R., Kim S.H., Kim J.W. Elevated levels of a-synuclein oligomer in the cerebrospinal fluid of drug-narve patients with Parkinson’s disease // J. Clin. Neurol. 2011. Vol. 7. № 4. P 215-222.

Parnetti L., Chiasserini D., Persichetti E. et al. Cerebrospinal fluid lysosomal enzymes and alpha-synuclein in Parkinson’s disease // Mov. Disord. 2014. Vol. 29. № 8. P.1019-1027.

Pchelina S.N., Yakimovskii A.F., Ivanova O.N. et al. G2019S LRRK2 mutation in familial and sporadic Parkinson’s disease in Russia // Mov. Disord. 2006. Vol. 21. P. 2234-2236.

Pchelina S.N., Yakimovskii A.F., Emelyanov A.K. et al. Screening for LRRK2 mutations in patients with Parkinson’s disease in Russia: identification of a novel LRRK2 variant // Eur. J. Neurol. 2008. Vol. 15. P. 692-696.

Pchelina S.N., Nuzhnyi E.P., Emelyanov A.K. et al. Increased plasma oligomeric alpha-synuclein in patients with lysosomal storage diseases // Neurosci. Lett. 2014. Vol. 583C. P. 188-193.

Pellicano C., Buttarelli F.R., Circella A. et al. Dopamine transporter immunoreactivity in peripheral blood lymphocytes discriminates Parkinson’s disease from essential tremor // J. Neural. Transm. 2007. Vol. 114. P. 935-938.

Perez R., Waymire J.C., Lin E. et al. A role for alpha-synuclein in the regulation of dopamine biosynthesis // J. Neurosci. 2002. Vol. 22. P. 3090-3099.

Polymeropoulos M.H., Lavedan C., Leroy E. et al. Mutation in the alpha-synuclein gene identifi ed in families with Parkinson’s disease // Science. 1997. Vol. 276. P 2045-2047.

Prigione A., Piazza F., Brighina L. et al. Alpha-synuclein nitration and autophagy response are induced in peripheral blood cells from patients with Parkinson disease // Neurosci. Lett. 2010. Vol. 477. P. 6-10.

Proukakis C., Dudzik C.G., Brier T. et al. A novel a-synuclein missense mutation in Parkinson disease // Neurology. 2013. Vol. 80. № 11. P 1062-1064.

SchmidA.W., FauvetB., MoniatteM., LashuelH.A. Alpha-synuclein post-translational modifications as potential biomarkers for Parkinson disease and other synucleinopathies // Mol. Cell Proteomics. 2013. Vol. 12. № 12. P 3543-3558.

Shi M., Bradner J., Hancock A.M. et al. Cerebrospinal fluid biomarkers for Parkinson disease diagnosis and progression // Ann. Neurol. 2011. Vol. 69. P. 570-580.

Singleton A.B., Farrer M., Johnson J. et al Aalpha-Synuclein locus triplication causes Parkinson’s disease // Science. 2003. Vol. 302. № 5646. P 841.

Smith B.R., Santos M.B., MarshallM.S. et al. Neuronal inclusions of a-synuclein contribute to the pathogenesis of Krabbe disease // J. Pathol. 2014. [Epub ahead of print].

Spillantini M.G., SchmidtM.L., Lee V.M.Y. et al. Alph-asynuclein in Lewy bodies //Nature. 1997. Vol. 388. P. 839-840.

Tokuda T., Qureshi M.M., Ardah M.T, et al. Detection of elevated levels of a-synuclein oligomers in CSF from patients with Parkinson disease // Neurology. 2010. Vol. 75. P. 1766-1772.

Toth B., ErdosM., SzekelyA., Ritli L., Bagossi P., Sumegi J., Marodi L. Molecular genetic characterization of novel sphingomyelin phosphodiesterase 1 mutations causing niemann-pick disease // JIMD Rep. 2012. Vol. 3. P 125-129.

Ueda K., Fukushima H., Masliah E. et al. Molecular cloning of cDNA encoding an unrecognized component of amyloid in Alzheimer disease // PNAS. 1993. Vol. 90. P 11282-11286.

Usenko T., Emelyanov A., Nuzhnyi E., Boukina T., Zakharova E., Pchelina S. Increased level of alpha-synuclein oligomers in blood plasma in Gaucher disease // European J. Human Genetics. 2013. Vol. 21. Suppl. 2. P. 250.

VernonA.C., BallardC., ModoM. Neuroimaging for Lewy body disease: is the in vivo molecular imaging of a-synuclein neuropathology required and feasible? // Brain. Res. Rev. 2010. Vol. 65. P. 28-55.

Waxman E.A., Giasson B.I. A novel, high-efficiency cellular model of fibrillar alpha-synuclein inclusions and the examination of mutations that inhibit amyloid formation // J. Neurochem.2010. Vol. 113. P. 374-388.

Westerlund M., Belin A.C., Anvret A. et al.Cerebellar alpha-synuclein levels are decreased in Parkinson’s disease and do not correlate with SNCA polymorphisms associated with disease in a Swedish material // FASEB J. 2008. Vol. 22. P 3509-3514.

Winder-Rhodes S.E., Garcia-Reitbock P., Ban M., Evans J.R. et al. Genetic and pathological links between Parkinson’s disease and the lysosomal disorder Sanfilippo syndrome // Mov. Disord. 2012. Vol. 27. № 2. P 312-315.

Xu Y.H., Sun Y., Ran H., Quinn B., Witte D., Grabowski G.A. Accumulation and distribution of a-synuclein and ubiquitin in the CNS of Gaucher disease mouse models // Mol. Genet. Metab. 2011. Vol. 102. № 4. P 436-447.

Zarranz J.J., Alegre J., Gomez-Esteban J.C. et al. The new mutation, E46K, of alpha- synuclein causes Parkinson and Lewy body dementia // Ann. Neurol. 2004. Vol. 55. P 164-173.

Zech M., Nubling G., Castrop F. et al. Niemann-pick C disease gene mutations and age-related neurodegenerative disorders // PLoS One. 2013. Vol. 8. № 12. P e82879.

<< | >>
Источник: М.В. Угрюмова. НЕЙРОДЕГЕНЕРАТИВНЫЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ: от генома до целостного организма. В 2-х томах. Том 1 / Под ред. М.В. Угрюмова. - М.: Научный мир,2014. - 580 с.. 2014

Еще по теме Заключение:

  1. Заключение
  2. Заключение
  3. Заключение
  4. Заключение
  5. Заключение
  6. Заключение
  7. Заключение
  8. Заключение
  9. 2.5. Рациональное трудоустройство больных по заключению КЭК
  10. Патоморфологическое заключение
  11. Вместо заключения
  12. Параграф пятый. Об общих заключениях по действиям мозга
- Акушерство и гинекология - Анатомия - Андрология - Биология - Болезни уха, горла и носа - Валеология - Ветеринария - Внутренние болезни - Военно-полевая медицина - Восстановительная медицина - Гастроэнтерология и гепатология - Гематология - Геронтология, гериатрия - Гигиена и санэпидконтроль - Дерматология - Диетология - Здравоохранение - Иммунология и аллергология - Интенсивная терапия, анестезиология и реанимация - Инфекционные заболевания - Информационные технологии в медицине - История медицины - Кардиология - Клинические методы диагностики - Кожные и венерические болезни - Комплементарная медицина - Лучевая диагностика, лучевая терапия - Маммология - Медицина катастроф - Медицинская паразитология - Медицинская этика - Медицинские приборы - Медицинское право - Наследственные болезни - Неврология и нейрохирургия - Нефрология - Онкология - Организация системы здравоохранения - Оториноларингология - Офтальмология - Патофизиология - Педиатрия - Приборы медицинского назначения - Психиатрия - Психология - Пульмонология - Стоматология - Судебная медицина - Токсикология - Травматология - Фармакология и фармацевтика - Физиология - Фтизиатрия - Хирургия - Эмбриология и гистология - Эпидемиология -