Заключение
На основании анализа большого блока экспериментальных и клинических исследований мы представили описание начальных этапов физико-биохимических событий в нейронах, которые являются пусковыми факторами развития амилои- доза нейронов и раннего патогенеза БА.
Продолжительные стрессовые ситуации и информационное давление на организм сопровождаются интенсивным синтезом белка в нейронах. В зонах активного синтеза белка накапливаются побочные продукты синтеза белка: молекулы АМР и пирофосфатов. Пирофосфаты могут при гидролизе выделять большое количество энергии, которая рассеивается в виде тепловой энергии и может негативно влиять на нейрон. Фосфорилирование постсинтетических молекул АРР переключает процессинг АРР на амилоидный путь при участии Р-секретазы. Эти события вызывают эвакуацию из зоны синтеза белка фосфатов, блокируют гидролиз пирофосфатов и увеличивают концентрацию постреакционных молекул Ар. ТБ также принимает участие в эвакуации фосфатов и ингибировании гидролиза PPi, доставляя к митохондриям фосфаты, а также другие компоненты, необходимые для синтеза АТФ. При участии шаперонов молекулы Ар приобретают физиологическую конформацию фАр, выполняют «свои» присущие им функции и в определенной ситуации индуцируют дополнительный синтез АРР в нейроне. В исключительных случаях процесс может выйти из-под контроля: фАр индуцируют дополнительный синтез АРР, как следствие - фосфорилирован- ный АРР при процессировании увеличивает количество молекул Ар. При высокой концентрации фАр может индуцировать дополнительный синтез АРР в соседних нейронах и провоцировать в них развитие аналогичных патологических процессов. При высоких концентрациях фрагментов Ар часть из них, минуя шапероны, приобретают «дикую» коформацию нано-Ар. Увеличение продукции молекул Ар предопределяет процессирование мономерных нано-Ар, которые негативно воздействуют на синапсы и мембраны нейронов, а также образуют олигомеры нано- Ар разной архитектуры: фибриллярные, выпадающие в виде фибрилл и бляшек, или округлые. Прогрессирующее поражение синапсов и клеточных мембран вызывает дисфункцию митохондрий (Filosto et al., 2011), ведет к нарушению ионного обмена нейронов, что вызывает генерирование реактивных радикалов и окислов, формирующих оксидативный стресс (Facecchia et al., 2011). При продолжительном отсутствии восстановительного периода покоя в нейроне происходит перегрузка защитных систем, которая вызывает изменения условий эвакуации фосфатов и других метаболитов из зоны синтеза белка. Перегрузка ТБ фосфатами приводит к гиперфосфорилированию ТБ, образованию между молекулами ТБ дифосфатных мостиков (Уверский и др., 1999) и формированию двойных спиральных цепочек, которые заполняют микротрубочки и препятствуют доставку к митохондриям исходных компонентов, необходимых для синтеза АТР. Это дополнительно вызывает дисфункцию митохондрий, липидного и углеводного обмена, образование нейрофибриллярных клубков внутри нервных клеток, коллапс транспортной системы внутри нейрона, а затем и гибель нейронов. Таким образом, причиной гибели нейронов являются вторичные внутринейрональные метаболические изменения.Подводя итоги можно констатировать, что процесс образования межклеточных бляшек, фибрилл и волокон является приспособительной реакцией организма для сохранения функциональной активности основных рефлекторных процессов при утрате биохимических межнейрональных контактов. Исследование мощной экспериментальной базы позволило выявить значительные изменения нейробиологического каскада в нейронах при начальном развитии амилоидоза нейронов в латентной стадии БА, которые вызывают вторичные внутринейрональные изменения метаболического и структурного характера и демонстрируют мультифакторность патологического процесса. Мы согласны с мнением большинства исследователей, что для определения начальных этапов амилоидоза нейронов и диагностики латентной стадии БА наиболее надежными маркерами являются Ар (Masliah et al., 1996; Niedowicz et al., 2012) с физиологической конформацией и конформационно модифицированные нано-Ар, а также гиперфосфорилированный ТБ (Braak, Braak, 1996; Chun, Johnson, 2007b).
Успешно разрабатываются биомаркеры для определения ключевых фаз развития патологии БА и контроля эффективности терапии этого заболевания (Hampel et al., 2011).Наши выводы убедительно показывают, что все вышеописанные процессы протекают параллельно. При этом нейроны максимально используют все защитные ресурсы клетки, чтобы избежать гибели. Полученные результаты предлагают новые подходы к разработке молекулярной диагностики БА и открывают новые перспективы поиска оптимальной патогенетической терапии БА.
Литература
Ашмарин И.Н. Нейрохимия. М.: МГУ, 2001. 463 с.
Белоусов Ю.Б., Медников О.Н., Чикина Е.С. Фармакоэкономические аспекты лечения деменции в РФ // Рус. Мед. Журн. 2005. Т 13. № 20. С. 1354-1348.
БехтереваН.П. Здоровый и больной мозг человека. Л.: Наука, 1988. 262 с.
Гаврилова С.И., Колыхалов И.В., Федорова Я.Ф. и др. Возможности превентивной терапии болезни Альцгеймера: результаты 3-летнего проспективного открытого сравнительного исследования эффективности и безопасности курсовой терапии церебрализином и кавинтоном у пожилых пациентов с синдромом мягкого когнитивного снижения // Журнал неврологии и психиатрии. 2010. Т 110. № 1. С. 62-69.
Галзитская О.В., Гарбузинский С.А., Лобанов М.Ю. Поиск амилоидогенных участков белковой цепи // Молекулярная биология. 2006. Т. 40. № 5. С. 910-918.
Герасимов Н.П. Двойное слепое плацебо-контролируемое исследование эффективности цереброли- зина при болезни Альцгеймера // Соц. и клин. психиат. 2000. № 2. С. 35-40.
Гуляева Н.В. Научная конференция «Нейрохимия: фундаментальные и прикладные аспекты». М.: РАН, 2005. С. 163-163.
ЕщенкоН.Д. Биохимия психических и нервных болезней. СПб.: СПб ГУ, 2004.
Завалишин И.А., ЗахароваМ.Н. Конформационые болезни: неврологические аспекты: обзор // Журнал неврологии и психиатрии. 2003. № 1. С. 54-60.
Завалишин И.А., Яхно Н.Н., Гаврилова С.И. Нейродегенеративные болезни и старение. Ред. И.А. Завалишин, Н.Н. Яхно, С.И. Гаврилова. М., 2001. С. 242-261.
Каминский Ю.Г., Мальцев А.В., Байрамов В.М.
и др. Ферментные и конформационные изменения патогенных белков при амилоидозе в нейроне // Нейрохимия. 2005. Т 22. № 2. С. 97-101.Линг Г. Физическая теория живой клетки. Незамеченная революция. СПб., 2008.
Лю Б.Н., Исмаилов С.Б., Лю М.Б. Состояния цитоскелета: связь с «кислородно-перекисными» эффектами в норме, при клеточных патологиях и апоптозе // Биомед. химия. 2008. Т 54. № 1. С. 58-77.
Мальцев А.В., Галзитская О.В. Образование и участие нано-амилоидов в патогенезе болезни Альцне- ймера и других амилоидогенных заболеваний // Биомед. химия. 2010. Т 56. С. 624-638.
Мальцев А.В., МироноваГ.Д., Байрамов В.М. Официальный бюллетень федеральной службы по интеллектуальной собственности по патентам и товарным знакам «Изобретения, полезные модели».
2008. № 16. Ru.2006141527.A.
Наливаева Н.Н., Беляев Н.Д., Тёрнер А.Дж., Журавин И.А. Роль ферментов метаболизма амилоидного пептида в патогенезе деменции альцгеймеровского типа: поиск методов ранней диагностики и лечения // Психиатрия. 2008. Т 4. № 6. С. 34-42.
Раевский К.С. Возбуждающие аминокислоты как транслиттеры // Итоги науки и техники ВИНИТИ. Физиология человека и животных. М., 1988. Т 36.
РогаевЕ.И. Болезнь Альцгеймера и старение: от нейробиологии к терапии. М.: РАМН, 1999. С. 83-86.
Уверский В.Н., Галзитская О.В., Винтер С. и др. Влияние избыточного фосфорилирования на структурные свойства белка ТАУ // Цитология. 1999. Т 41. С. 540-549.
Четверин А.Б., Спирин А.С. Биоэнергетика и синтез белка // Успехи биол. химии. 1983. Т 24. С. 3-39.
Шиф М. Метилирование и деметилирование ДНК как мишени противораковой терапии // Биохимия. 2005. Т 70, № 5. С. 651-669.
Шноль С.Э. Физико-химические факторы биологической эволюции. М.: Наука, 1979. 274 с.
Этинген Л.Е. Нормальная морфология человека старческого возраста. М., 2003. С. 192.
AbrahaA., GhoshalN., Gamblin T.C. etal. C-terminal inhibition of tau assembly in vitro and in Alzheimer’s disease // J. Cell Sci. 2000. Vol. 113. Pt. 21. P. 3737-3745.
Alonso A. del C., Li B., Grundke-Iqbal I. et al. Polymerization of hyperphosphorylated tau into filaments eliminates its inhibitory activity // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006. Vol. 103. P. 8864-8869.
Anderson A.J., Pike C.J., Cotman C.W. Differential induction of immediate early gene proteins in cultured neurons by beta-amyloid (A beta): association of c-Jun with A beta-induced apoptosis // J. Neurochem. 1995. Vol. 65. P. 1487-1498.
Andreadis A., Brown W.M., Kosik K.S. Structure and novel exons of the human tau gene // Biochemistry (Mosc.). 1992. Vol. 31. P. 10626-10633.
Arai H., Lee VM., Messinger M.L. et al. Expression patterns of beta-amyloid precursor protein (beta-APP) in neural and nonneural human tissues from Alzheimer’s disease and control subjects // Ann. Neurol. 1991. Vol. 30. P. 686-693.
Arnold C.S., Johnson G.V., Cole R.N. et al. The microtubule-associated protein tau is extensively modified with O-linked N-acetylglucosamine // J. Biol. Chem. 1996. Vol. 271. P. 28741-28744.
Avila J., Lucas J.J., Perez M. et al. Role of tau protein in both physiological and pathological conditions // Physiol. Rev. 2004. Vol. 84. P. 361-384.
Baker M., Litvan I., Houlden H. et al. Association of an extended haplotype in the tau gene with progressive supranuclear palsy // Hum. Mol. Genet. 1999. Vol. 8. P. 711-715.
Ban T., Goto Y. Direct observation of amyloid growth monitored by total internal reflection fluorescence microscopy // Methods Enzymol. 2006. Vol. 413. P. 91-102.
Banati R.B., Gehrmann J., Lannes-Vieira J. et al. Inflammatory reaction in experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) is accompanied by a microglial expression of the beta A4-amyloid precursor protein (APP) // Glia. 1995. Vol. 14. P. 209-215.
Belyaev N.D., Nalivaeva N.N., Makova N.Z. et al. Neprilysin gene expression requires binding of the amyloid precursor protein intracellular domain to its promoter: implications for Alzheimer disease // EMBO Rep.
2009. Vol. 10. P.
94-100.Bertoni-Freddari C., Fattoretti P., Paoloni R. et al. Impaired dynamic morphology of cerebellar mitochondria in physiological aging and Alzheimer’s disease // Ann. NY Acad. Sci. 1997. Vol. 826. P. 479-482.
Bertram L., Hiltunen M., Parkinson M. et al. Family-based association between Alzheimer’s disease and variants in UBQLN1 // N. Engl. J. Med. 2005. Vol. 352. P. 884-894.
Biernat J., Gustke N., Drewes G. et al. Phosphorylation of Ser262 strongly reduces binding of tau to microtubules: distinction between PHF-like immunoreactivity and microtubule binding // Neuron. 1993. Vol. 11. P. 153-163.
Biernat J., Wu Y.-Z., Timm T. et al. Protein kinase MARK/PAR-1 is required for neurite outgrowth and establishment of neuronal polarity // Mol. Biol. Cell. 2002. Vol. 13. P. 4013-4028.
Braak H., Braak E. Evolution of the neuropathology of Alzheimer’s disease // Acta. Neurol. Scand. Suppl. 1996. Vol. 165. P. 3-12.
Brandt R., Leger J., Lee G. Interaction of tau with the neural plasma membrane mediated by tau’s amino- terminal projection domain // J. Cell Biol. 1995. Vol. 131. P. 1327-1340.
Bucciantini M., Calloni G., Chiti F. et al. Prefibrillar amyloid protein aggregates share common features of cytotoxicity // J. Biol. Chem. 2004. Vol. 279. P. 31374-31382.
Buee L., Bussiere T., Buee-Scherrer V. et al. Tau protein isoforms, phosphorylation and role in neurodegenerative disorders // Brain Res. Brain Res. Rev. 2000. Vol. 33. P. 95-130.
Chen J., Kanai Y., Cowan N.J. et al. Projection domains of MAP2 and tau determine spacings between microtubules in dendrites and axons // Nature. 1992. Vol. 360. P. 674-677.
Chen Y.R., Huang H.B., Chyan C.L. et al. The effect of Abeta conformation on the metal affinity and aggregation mechanism studied by circular dichroism spectroscopy // J. Biochem. (Tokyo). 2006. Vol. 139. P. 733-740.
Chiti F., Webster P., Taddei N. et al. Designing conditions for in vitro formation of amyloid protofilaments and fibrils // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. Vol. 96. P. 3590-3594.
Chiti F., Taddei N., Bucciantini M. et al. Mutational analysis of the propensity for amyloid formation by a globular protein // EMBO J. 2000. Vol. 19. P 1441-1449.
Chiti F., Stefani M., Taddei N. et al. Rationalization of the effects of mutations on peptide and protein aggregation rates // Nature. 2003. Vol. 424. P. 805-808.
Cho J.-H., Johnson G.V.W. Glycogen synthase kinase 3beta phosphorylates tau at both primed and unprimed sites. Differential impact on microtubule binding // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278. P. 187-193.
Cho J.-H., Johnson G.V.W. Primed phosphorylation of tau at Thr231 by glycogen synthase kinase 3beta (GSK3beta) plays a critical role in regulating tau’s ability to bind and stabilize microtubules // J. Neu- rochem. 2004. Vol. 88. P. 349-358.
Choi B.H., Kim R.C., Vaughan P.J. et al. Decreases in protease nexins in Alzheimer’s disease brain // Neuro- biol. Aging. 1995. Vol. 16. P. 557-562.
Chun W., Johnson G.V.W. The role of tau phosphorylation and cleavage in neuronal cell death // Front. Biosci. J. Virtual Libr. 2007a. Vol. 12. P. 733-756.
Chun W., Johnson G.V.W. Activation of glycogen synthase kinase 3beta promotes the intermolecular association of tau. The use of fluorescence resonance energy transfer microscopy // J. Biol. Chem. 2007b. Vol. 282. P. 23410-23417.
Cordy J.M., Hussain I., Dingwall C. et al. Exclusively targeting beta-secretase to lipid rafts by GPI-anchor addition up-regulates beta-site processing of the amyloid precursor protein // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003. Vol. 100. P. 11735-11740.
Cribbs D.H., Pike C.J., Weinstein S.L. et al. All-D-enantiomers of beta-amyloid exhibit similar biological properties to all-L-beta-amyloids // J. Biol. Chem. 1997. Vol. 272. P. 7431-7436.
Cripps D., Thomas S.N., Jeng Y. et al. Alzheimer disease-specific conformation of hyperphosphorylated paired helical filament-Tau is polyubiquitinated through Lys-48, Lys-11, and Lys-6 ubiquitin conjugation // J. Biol. Chem. 2006. Vol. 281. P. 10825-10838.
Da Silva L.P., Lindahl M., Lundin M. et al. Protein phosphorylation by inorganic pyrophosphate in yeast mitochondria // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1991. Vol. 178. P. 1359-1364.
Dawson H.N., Ferreira A., Eyster M.V. et al. Inhibition of neuronal maturation in primary hippocampal neurons from tau deficient mice // J. Cell Sci. 2001. Vol. 114. P. 1179-1187.
Delacourte A., David J.P., Sergeant N. et al. The biochemical pathway of neurofibrillary degeneration in aging and Alzheimer’s disease // Neurology. 1999. Vol. 52. P. 1158-1165.
Deller T., Frotscher M., Nitsch R. Sprouting of crossed entorhinodentate fibers after a unilateral entorhinal lesion: anterograde tracing of fiber reorganization with Phaseolus vulgaris-leucoagglutinin (PHAL) // J. Comp. Neurol. 1996. Vol. 365. P. 42-55.
De Strooper B., Annaert W. Proteolytic processing and cell biological functions of the amyloid precursor protein // J. Cell Sci. 2000. Vol. 113. Pt. 11. P. 1857-1870.
De StrooperB., Annaert W. Presenilins and the intramembrane proteolysis of proteins: facts and fiction // Nat. Cell Biol. 2001. Vol. 3. P. E221-225.
Ding H., Matthews T.A., Johnson G.V.W. Site-specific phosphorylation and caspase cleavage differentially impact tau-microtubule interactions and tau aggregation // J. Biol. Chem. 2006. Vol. 281. P. 19107-19114.
Dobson C.M. Protein misfolding, evolution and disease // Trends Biochem. Sci. 1999. Vol. 24. P. 329-332.
Dovidchenko N.V., Finkelstein A.V., Galzitskaya O.V. How to determine the size of folding nuclei of protofibrils from the concentration dependence of the rate and lag-time of aggregation? I. Modeling the amyloid protofibril formation // J. Phys. Chem. 2014. in press.
Ebneth A., Godemann R., Stamer K. et al. Overexpression of tau protein inhibits kinesin-dependent trafficking of vesicles, mitochondria, and endoplasmic reticulum: implications for Alzheimer’s disease // J. Cell Biol. 1998. Vol. 143. P. 777-794.
Esteras-Chopo A., Serrano L., Lopez de la PazM. The amyloid stretch hypothesis: recruiting proteins toward the dark side // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2005. Vol. 102. P 16672-16677.
Facecchia K., Fochesato L.-A., Ray S.D. et al. Oxidative toxicity in neurodegenerative diseases: role of mitochondrial dysfunction and therapeutic strategies // J. Toxicol. 2011. Vol. 2011. P. 683-728.
Fandrich M., FletcherM.A., Dobson C.M. Amyloid fibrils from muscle myoglobin // Nature. 2001. Vol. 410. P 165-166.
Fardilha M., Vieira S.I., Barros A. et al. Differential distribution of Alzheimer’s amyloid precursor protein family variants in human sperm // Ann. NY Acad. Sci. 2007. Vol. 1096. P 196-206.
Fath T., Eidenmuller J., Brandt R. Tau-mediated cytotoxicity in a pseudohyperphosphorylation model of Alzheimer’s disease // J. Neurosci. Off. J. Soc. Neurosci. 2002. Vol. 22. P 9733-9741.
Fay N., Inoue Y., Bousset L. et al. Assembly of the yeast prion Ure2p into protein fibrils. Thermodynamic and kinetic characterization // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278. P 30199-30205.
Ferrari A., Hoerndli F., Baechi T. et al. Beta-amyloid induces paired helical filament-like tau filaments in tissue culture // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278. P 40162-40168.
Figueiredo-Pereira M.E., Efthimiopoulos S., Tezapsidis N. et al. Distinct secretases, a cysteine protease and a serine protease, generate the C termini of amyloid beta-proteins Abeta1-40 and Abeta1-42, respectively // J. Neurochem. 1999. Vol. 72. P 1417-1422.
Filosto M., Scarpelli M., Cotelli M.S. et al. The role of mitochondria in neurodegenerative diseases // J. Neurol. 2011. Vol. 258. P 1763-1774.
Fisher G.H., Petrucelli L., Gardner C. et al. Free D-amino acids in human cerebrospinal fluid of Alzheimer disease, multiple sclerosis, and healthy control subjects // Mol. Chem. Neuropathol. Spons. Int. Soc. Neurochem. World Fed. Neurol. Res. Groups Neurochem. Cerebrospinal Fluid. 1994. Vol. 23. P 115-124.
Furukawa K., Sopher B.L., Rydel R.E. et al. Increased activity-regulating and neuroprotective efficacy of alpha-secretase-derived secreted amyloid precursor protein conferred by a C-terminal heparin-binding domain // J. Neurochem. 1996. Vol. 67. P 1882-1896.
Galzitskaya O.V., Garbuzynskiy S.O., Lobanov M.Y. Is it possible to predict amyloidogenic regions from sequence alone? // J. Bioinform. Comput. Biol. 2006a. Vol. 4. P 373-388.
Galzitskaya O.V., Garbuzynskiy S.O., Lobanov M.Y. Prediction of amyloidogenic and disordered regions in protein chains // PLoS Comput. Biol. 2006b. Vol. 2. P e177.
Garbuzynskiy S.O., LobanovM.Y., Galzitskaya O.V. FoldAmyloid: a method of prediction of amyloidogenic regions from protein sequence // Bioinformatics. 2010. Vol. 26. P. 326-332.
Gelfanova V., Higgs R.E., Dean R.A. et al. Quantitative analysis of amyloid-beta peptides in cerebrospinal fluid using immunoprecipitation and MALDI-Tof mass spectrometry // Brief. Funct. Genomic. Pro- teomic. 2007. Vol. 6. P 149-158.
Geula C., Mesulam M.M. Cholinesterases and the pathology of Alzheimer disease // Alzheimer Dis. Assoc. Disord. 1995. Vol. 9. Suppl. 2. P 23-28.
Gevaert K., Goethals M., Martens L. et al. Exploring proteomes and analyzing protein processing by mass spectrometric identification of sorted N-terminal peptides // Nat. Biotechnol. 2003. Vol. 21. P 566-569.
Ghiso J., Shayo M., Calero M. et al. Systemic catabolism of Alzheimer’s Abeta40 and Abeta42 // J. Biol. Chem. 2004. Vol. 279. P. 45897-45908.
Giasson B.I., Lee V.M.-Y., Trojanowski J.Q. Interactions of amyloidogenic proteins // Neuromolecular Med.
2003. Vol. 4. P. 49-58.
Goedert M., Spillantini M.G., Jakes R. et al. Multiple isoforms of human microtubule-associated protein tau: sequences and localization in neurofibrillary tangles ofAlzheimer’s disease // Neuron. 1989. Vol. 3. P. 519-526.
GoedertM., Spillantini M.G., Crowther R.A. Tau proteins and neurofibrillary degeneration // Brain Pathol. Zurich Switz. 1991. Vol. 1. P. 279-286.
Goedert M., Spillantini M.G., Crowther R.A. et al. Tau gene mutation in familial progressive subcortical gliosis // Nat. Med. 1999. Vol. 5. P 454-457.
Goedert M., Satumtira S., Jakes R. et al. Reduced binding of protein phosphatase 2A to tau protein with frontotemporal dementia and parkinsonism linked to chromosome 17 mutations // J. Neurochem. 2000. Vol. 75. P. 2155-2162.
Greer S., Zamenhof S. Studies on depurination of DNA by heat // J. Mol. Biol. 1962. Vol. 4. P 123-141.
Grundke-Iqbal I., Iqbal K., Tung Y.C. et al. Abnormal phosphorylation of the microtubule-associated protein tau (tau) inAlzheimer cytoskeletal pathology // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. Vol. 83. P. 4913-4917.
Haase C., Stieler J.T., Arendt T. et al. Pseudophosphorylation of tau protein alters its ability for self-aggregation // J. Neurochem. 2004. Vol. 88. P 1509-1520.
Hampel H., Wilcock G., Andrieu S. et al. Biomarkers for Alzheimer’s disease therapeutic trials // Prog. Neu- robiol. 2011. Vol. 95. P 579-593.
Hardy J., Allsop D. Amyloid deposition as the central event in the aetiology of Alzheimer’s disease // Trends Pharmacol. Sci. 1991. Vol. 12. P 383-388.
Hardy J., Selkoe D.J. The amyloid hypothesis of Alzheimer’s disease: progress and problems on the road to therapeutics // Science. 2002. Vol. 297. P. 353-356.
Hernandez F., Avila J. Tauopathies // Cell. Mol. Life Sci. CMLS. 2007. Vol. 64. P 2219-2233.
Hills R.D. Jr, Brooks C.L. 3rd. Hydrophobic cooperativity as a mechanism for amyloid nucleation // J. Mol. Biol. 2007. Vol. 368. P. 894-901.
Hong M., Zhukareva V., Vogelsberg-Ragaglia V et al. Mutation-specific functional impairments in distinct tau isoforms of hereditary FTDP-17 // Science. 1998. Vol. 282. P 1914-1917.
Hoyer S. Brain glucose and energy metabolism abnormalities in sporadic Alzheimer disease. Causes and consequences: an update // Exp. Gerontol. 2000. Vol. 35. P 1363-1372.
IbbaM., SollD. Aminoacyl-tRNA synthesis // Annu. Rev. Biochem. 2000. Vol. 69. P 617-650.
Iqbal K., Grundke-Iqbal I. Metabolic/signal transduction hypothesis of Alzheimer’s disease and other tauop- athies // Acta. Neuropathol. (Berl.). 2005. Vol. 109. P 25-31.
Iqbal K., Alonso A. del C., Chen S. et al. Tau pathology in Alzheimer disease and other tauopathies // Bio- chim. Biophys. Acta. 2005. Vol. 1739. P. 198-210.
Ivanova M.I., Sawaya M.R., Gingery M. et al. An amyloid-forming segment of beta2-microglobulin suggests a molecular model for the fibril // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. Vol. 101. P 10584-10589.
Iwata A., Chen X.-H., McIntosh T.K. et al. Long-term accumulation of amyloid-beta in axons following brain trauma without persistent upregulation of amyloid precursor protein genes // J. Neuropathol. Exp. Neurol. 2002. Vol. 61. P 1056-1068.
Johansson J. Membrane properties and amyloid fibril formation of lung surfactant protein C // Biochem. Soc. Trans. 2001. Vol. 29. P 601-606.
Johnson G.V.W., Bailey C.D.C. Tau, where are we now? // J. Alzheimers Dis. JAD. 2002. Vol. 4. P 375-398.
Johnson G.V., Jenkins S.M. Tau protein in normal and Alzheimer’s disease brain // J. Alzheimers Dis. JAD. 1999. Vol. 1. P 307-328.
Johnson G.V.W., Stoothoff W.H. Tau phosphorylation in neuronal cell function and dysfunction // J. Cell Sci.
2004. Vol. 117. P 5721-5729.
Kajava A.V., Baxa U., Wickner R.B. et al. A model for Ure2p prion filaments and other amyloids: the parallel superpleated beta-structure // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. Vol. 101. P. 7885-7890.
Kaneko I., Yamada N., Sakuraba Y. et al. Suppression of mitochondrial succinate dehydrogenase, a primary target of beta-amyloid, and its derivative racemized at Ser residue // J. Neurochem. 1995. Vol. 65. P. 2585-2593.
Kang J., Lemaire H.G., Unterbeck A. et al. The precursor of Alzheimer’s disease amyloid A4 protein resembles a cell-surface receptor // Nature. 1987. Vol. 325. P. 733-736.
Kayed R., Head E., Thompson J.L. et al. Common structure of soluble amyloid oligomers implies common mechanism of pathogenesis // Science. 2003. Vol. 300. P 486-489.
Kheterpal I., Chen M., Cook K.D. et al. Structural differences in Abeta amyloid protofibrils and fibrils mapped by hydrogen exchange--mass spectrometry with on-line proteolytic fragmentation // J. Mol. Biol. 2006. Vol. 361. P 785-795.
Kirschner D.A., Inouye H., Duffy L.K. et al. Synthetic peptide homologous to beta protein from Alzheimer disease forms amyloid-like fibrils in vitro // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1987. Vol. 84. P. 6953-6957.
Konig G., Monning U., Czech C. et al. Identification and differential expression of a novel alternative splice isoform of the beta A4 amyloid precursor protein (APP) mRNA in leukocytes and brain microglial cells // J. Biol. Chem. 1992. Vol. 267. P. 10804-10809.
Kopke E., Tung Y.C., Shaikh S. et al. Microtubule-associated protein tau. Abnormal phosphorylation of a non-paired helical filament pool in Alzheimer disease // J. Biol. Chem. 1993. Vol. 268. P. 24374-24384.
Korenberg J.R., Chen X.N., Schipper R. et al. Down syndrome phenotypes: the consequences of chromosomal imbalance // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. Vol. 91. P. 4997-5001.
Ksiezak-Reding H., Tracz E., Yang L.S. et al. Ultrastructural instability of paired helical filaments from corti- cobasal degeneration as examined by scanning transmission electron microscopy // Am. J. Pathol. 1996. Vol. 149. P. 639-651.
Kubo T., Nishimura S., Kumagae Y. et al. In vivo conversion of racemized beta-amyloid ([D-Ser 26]A beta 1-40) to truncated and toxic fragments ([D-Ser 26]A beta 25-35/40) and fragment presence in the brains of Alzheimer’s patients // J. Neurosci. Res. 2002. Vol. 70. P. 474-483.
Kubo T., Kumagae Y., Miller C.A. et al. Beta-amyloid racemized at the Ser26 residue in the brains of patients with Alzheimer disease: implications in the pathogenesis of Alzheimer disease // J. Neuropathol. Exp. Neurol. 2003. Vol. 62. P. 248-259.
Kuhla B., Haase C., Flach K. et al. Effect of pseudophosphorylation and cross-linking by lipid peroxidation and advanced glycation end product precursors on tau aggregation and filament formation // J. Biol. Chem. 2007. Vol. 282. P. 6984-6991.
Kurtz D.I., Sinex FM. Age related differences in the association of brain DNA and nuclear protein // Biochim. Biophys. Acta. 1967. Vol. 145. P. 840-842.
Lannfelt L., Basun H., Vigo-Pelfrey C. et al. Amyloid beta-peptide in cerebrospinal fluid in individuals with the Swedish Alzheimer amyloid precursor protein mutation // Neurosci. Lett. 1995. Vol. 199. P. 203-206.
Lanz TA., KarmilowiczM.J., WoodK.M. et al. Concentration-dependent modulation of amyloid-beta in vivo and in vitro using the gamma-secretase inhibitor, LY-450139 // J. Pharmacol. Exp. Ther. 2006. Vol. 319. P. 924-933.
Lehtimaki T., Pirttila T., Mehta P. et al. Apolipoprotein E (apoE) polymorphism and its influence on ApoE concentrations in the cerebrospinal fluid in Finnish patients with Alzheimer’s disease // Hum. Genet. 1995. Vol. 95. P. 39-42.
Li W.-Z., Li W.-P., Huang D.-K. et al. Dexamethasone and AP25-35 accelerate learning and memory impairments due to elevate amyloid precursor protein expression and neuronal apoptosis in 12-month male rats // Behav. Brain Res. 2012. Vol. 227. P. 142-149.
Liu T., Qian W.-J., Gritsenko M.A. et al. Human plasma N-glycoproteome analysis by immunoaffinity subtraction, hydrazide chemistry, and mass spectrometry // J. Proteome Res. 2005. Vol. 4. P. 2070-2080.
Lochhead PA., Sibbet G., Morrice N. et al. Activation-loop autophosphorylation is mediated by a novel transitional intermediate form of DYRKs // Cell. 2005. Vol. 121. P. 925-936.
Louw C., Gordon A., Johnston N. et al. Arginine deiminases: therapeutic tools in the etiology and pathogenesis of Alzheimer’s disease // J. Enzyme Inhib. Med. Chem. 2007. Vol. 22. P. 121-126.
Low L.-F., Anstey K.J. Dementia literacy: Recognition and beliefs on dementia of the Australian public // Alzheimers Dement. 2009. Vol. 5. P. 43-49.
Lu Q., Wood J.G. Functional studies of Alzheimer’s disease tau protein // J. Neurosci. Off. J. Soc. Neurosci. 1993. Vol. 13. P. 508-515.
Lu J., Miao J., Su T., Liu Y., He R. Formaldehyde induces hyperphosphorylation and polymerization of Tau protein both in vitro and in vivo // Biochim. Biophys. Acta. 2013. Vol. 1830. P. 4102-4116.
LundE.T., McKenna R., Evans D.B. et al. Characterization of the in vitro phosphorylation of human tau by tau protein kinase II (cdk5/p20) using mass spectrometry // J. Neurochem. 2001. Vol. 76. P. 1221-1232.
Ma B., Nussinov R. Molecular dynamics simulations of alanine rich beta-sheet oligomers: Insight into amyloid formation // Protein Sci. Publ. Protein Soc. 2002. Vol. 11. P. 2335-2350.
Ma Q.-F., Hu J., Wu W.-H. et al. Characterization of copper binding to the peptide amyloid-beta(1-16) associated with Alzheimer’s disease // Biopolymers. 2006. Vol. 83. P. 20-31.
Ma S.L., Pastorino L., ZhouX.Z. et al. Prolyl isomerase Pin1 promotes amyloid precursor protein (APP) turnover by inhibiting glycogen synthase kinase-3p (GSK3P) activity: novel mechanism for Pin1 to protect against Alzheimer disease // J. Biol. Chem. 2012. Vol. 287. P. 6969-6973.
Maat-Schieman M.L., Rozemuller A.J., van Duinen S.G. et al. Microglia in diffuse plaques in hereditary cerebral hemorrhage with amyloidosis (Dutch). An immunohistochemical study // J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1994. Vol. 53. P 483-491.
Maddalena A.S., Papassotiropoulos A., Gonzalez-Agosti C. et al. Cerebrospinal fluid profile of amyloid beta peptides in patients with Alzheimer’s disease determined by protein biochip technology // Neurode- gener. Dis. 2004. Vol. 1. P. 231-235.
MaltsevA.V., BystryakS., Galzitskaya O.V The role of P-amyloid peptide in neurodegenerative diseases // Ageing Res. Rev. 2011. Vol. 10. P. 440-452.
Mandell J.W., Banker G.A. A spatial gradient of tau protein phosphorylation in nascent axons // J. Neurosci. Off. J. Soc. Neurosci. 1996. Vol. 16. P. 5727-5740.
Masliah E., Sisk A., Mallory M. et al. Comparison of neurodegenerative pathology in transgenic mice overexpressing V717F beta-amyloid precursor protein and Alzheimer’s disease // J. Neurosci. Off. J. Soc. Neurosci. 1996. Vol. 16. P. 5795-5811.
Massi F., Straub J.E. Energy landscape theory for Alzheimer’s amyloid beta-peptide fibril elongation // Proteins. 2001. Vol. 42. P. 217-229.
Mattson M.P. Cellular actions of beta-amyloid precursor protein and its soluble and fibrillogenic derivatives // Physiol. Rev. 1997. Vol. 77. P 1081-1132.
McRae A., Ling E.A., Polinsky R. et al. Antibodies in the cerebrospinal fluid of some Alzheimer’s disease patients recognize amoeboid microglial cells in the developing rat central nervous system // Neuroscience. 1991. Vol. 41. P. 739-752.
Meek P.D., McKeithan K., Schumock G.T. Economic considerations in Alzheimer’s disease // Pharmacotherapy. 1998. Vol. 18. P. 68-73; discussion 79-82.
Minicozzi V., Stellato F., Comai M. et al. Identifying the minimal copper- and zinc-binding site sequence in amyloid-beta peptides // J. Biol. Chem. 2008. Vol. 283. P. 10784-10792.
Mita S., Sadlock J., Herbert J. et al. A cDNA specifying the human amyloid beta precursor protein (ABPP) encodes a 95-kDa polypeptide // Nucleic Acids Res. 1988. Vol. 16. P. 9351.
Molinari M., Eriksson K.K., Calanca V. et al. Contrasting functions of calreticulin and calnexin in glycoprotein folding and ER quality control // Mol. Cell. 2004. Vol. 13. P. 125-135.
Mori H., Hosoda K., Matsubara E. et al. Tau in cerebrospinal fluids: establishment of the sandwich ELISA with antibody specific to the repeat sequence in tau // Neurosci. Lett. 1995. Vol. 186. P. 181-183.
Moya K.L., Benowitz L.I., Schneider G.E. et al. The amyloid precursor protein is developmentally regulated and correlated with synaptogenesis // Dev. Biol. 1994. Vol. 161. P. 597-603.
Mucke L., Abraham C.R., Masliah E. Neurotrophic and neuroprotective effects of hAPP in transgenic mice // Ann. NY Acad. Sci. 1996. Vol. 777. P 82-88.
Mudher A., Lovestone S. Alzheimer’s disease-do tauists and baptists finally shake hands? // Trends Neurosci. 2002. Vol. 25. P. 22-26.
Musunuri S., Wetterhall M., Ingelsson M. et al. Quantification of the brain proteome in Alzheimer’s disease using multiplexed mass spectrometry // J. Proteome Res. 2014. Vol. 13. P 2056-2068.
Nalivaeva N.N., Fisk L.R., Belyaev N.D. et al. Amyloid-degrading enzymes as therapeutic targets in Alzheimer’s disease // Curr. Alzheimer Res. 2008. Vol. 5. P. 212-224.
Narayan P., Meehan S., Carver J.A. et al. Amyloid-P oligomers are sequestered by both intracellular and extracellular chaperones // Biochemistry (Mosc.). 2012. Vol. 51. P. 9270-9276.
Nelson R., Sawaya M.R., Balbirnie M. et al. Structure of the cross-beta spine of amyloid-like fibrils // Nature.
2005. Vol. 435. P. 773-778.
Nguyen P.H., Li M.S., Stock G. et al. Monomer adds to preformed structured oligomers of Abeta-peptides by a two-stage dock-lock mechanism // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007. Vol. 104. P. 111-116.
Niedowicz D.M., Beckett T.L., Matveev S. et al. Pittsburgh compound B and the postmortem diagnosis of Alzheimer disease // Ann. Neurol. 2012. Vol. 72. P. 564-570.
Nilsson M.R. Techniques to study amyloid fibril formation in vitro // Methods San Diego Calif. 2004. Vol. 34. P 151-160.
Pardossi-Piquard R., Petit A., Kawarai T. et al. Presenilin-dependent transcriptional control of the Abeta- degrading enzyme neprilysin by intracellular domains of betaAPP and APLP // Neuron. 2005. Vol. 46. P 541-554.
Pawar A.P., Dubay K.F., Zurdo J. et al. Prediction of «aggregation-prone» and «aggregation-susceptible» regions in proteins associated with neurodegenerative diseases // J. Mol. Biol. 2005. Vol. 350. P. 379-392. Perez M., Arrasate M., Montejo De Garcini E. et al. In vitro assembly of tau protein: mapping the regions involved in filament formation // Biochemistry (Mosc.). 2001. Vol. 40. P. 5983-5991.
Perlick D., Mattis S. Neuropsychological assessment in chronic care settings: potential utility and special considerations for evaluating dementia in the elderly // Alzheimer Dis. Assoc. Disord. 1994. Vol. 8. Suppl 1. P S209-213.
Priller C., Bauer T., Mitteregger G. et al. Synapse formation and function is modulated by the amyloid precursor protein // J. Neurosci. Off. J. Soc. Neurosci. 2006. Vol. 26. P. 7212-7221.
Probst A., Gotz J., Wiederhold K.H. et al. Axonopathy and amyotrophy in mice transgenic for human four- repeat tau protein // Acta Neuropathol. (Berl.). 2000. Vol. 99. P 469-481.
Prusiner S.B. Molecular biology of prions causing infectious and genetic encephalopathies of humans as well as scrapie of sheep and BSE of cattle // Dev. Biol. Stand. 1991. Vol. 75. P 55-74.
Prusiner S.B. Molecular biology and genetics of prion diseases // Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 1994. Vol. 343. P 447-463.
Prusiner S.B. Prion diseases and the BSE crisis // Science. 1997. Vol. 278. P 245-251.
Rao N.N., Gomez-Gama M.R., Kornberg A. Inorganic polyphosphate: essential for growth and survival // Annu. Rev. Biochem. 2009. Vol. 78. P 605-647.
RapoportM., Dawson H.N., Binder L.I. et al. Tau is essential to beta -amyloid-induced neurotoxicity // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. Vol. 99. P 6364-6369.
Rizzu P., Van Swieten J.C., Joosse M. et al. High prevalence of mutations in the microtubule-associated protein tau in a population study of frontotemporal dementia in the Netherlands // Am. J. Hum. Genet.
1999. Vol. 64. P 414-421.
Roch J.M., Masliah E., Roch-Levecq A.C. et al. Increase of synaptic density and memory retention by a peptide representing the trophic domain of the amyloid beta/A4 protein precursor // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. Vol. 91. P 7450-7454.
Rochet J.C., Lansbury P.T. Jr. Amyloid fibrillogenesis: themes and variations // Curr. Opin. Struct. Biol.
2000. Vol. 10. P 60-68.
Roher A.E., Lowenson J.D., Clarke S. et al. beta-Amyloid-(1-42) is a major component of cerebrovascular amyloid deposits: implications for the pathology of Alzheimer disease // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. Vol. 90. P 10836-10840.
Ryoo S.-R., Jeong H.K., Radnaabazar C. et al. DYRK1A-mediated hyperphosphorylation of Tau. A functional link between Down syndrome and Alzheimer disease // J. Biol. Chem. 2007. Vol. 282. P 34850-34857. Salloway S., Mintzer J., Weiner M.F. et al. Disease-modifying therapies in Alzheimer’s disease // Alzheimers Dement. 2008. Vol. 4. P. 65-79.
Scott C.W., Fieles A., Sygowski L.A. et al. Aggregation of tau protein by aluminum // Brain Res. 1993. Vol. 628. P. 77-84.
Shapira R., Austin G.E., Mirra S.S. Neuritic plaque amyloid in Alzheimer’s disease is highly racemized // J. Neurochem. 1988. Vol. 50. P. 69-74.
Shoji M., Golde T.E., Ghiso J. et al. Production of the Alzheimer amyloid beta protein by normal proteolytic processing // Science. 1992. Vol. 258. P. 126-129.
Singh N., Talalayeva Y., Tsiper M. et al. The role of Alzheimer’s disease-related presenilin 1 in intercellular adhesion // Exp. Cell Res. 2001. Vol. 263. P 1-13.
Sjoberg M.K., Shestakova E., Mansuroglu Z. et al. Tau protein binds to pericentromeric DNA: a putative role for nuclear tau in nucleolar organization // J. Cell Sci. 2006. Vol. 119. P. 2025-2034.
Smith D.H., Chen X.-H., Iwata A. et al. Amyloid beta accumulation in axons after traumatic brain injury in humans // J. Neurosurg. 2003. Vol. 98. P. 1072-1077.
Smyth M.D., Cribbs D.H., Tenner A.J. et al. Decreased levels of C1q in cerebrospinal fluid of living Alzheimer patients correlate with disease state // Neurobiol. Aging. 1994. Vol. 15. P 609-614.
Song J.S., Yang S.D. Tau protein kinase I/GSK-3 beta/kinase FA in heparin phosphorylates tau on Ser199, Thr231, Ser235, Ser262, Ser369, and Ser400 sites phosphorylated in Alzheimer disease brain // J. Protein Chem. 1995. Vol. 14. P 95-105.
Southwick P.C., Yamagata S.K., Echols C.L. Jr. et al. Assessment of amyloid beta protein in cerebrospinal fluid as an aid in the diagnosis of Alzheimer’s disease // J. Neurochem. 1996. Vol. 66. P. 259-265.
Spires T.L., Orne J.D., SantaCruz K. et al. Region-specific dissociation of neuronal loss and neurofibrillary pathology in a mouse model of tauopathy // Am. J. Pathol. 2006. Vol. 168. P. 1598-1607.
Spires-Jones T.L., de Calignon A., Matsui T. et al. In vivo imaging reveals dissociation between caspase activation and acute neuronal death in tangle-bearing neurons // J. Neurosci. Off. J. Soc. Neurosci. 2008. Vol. 28. P. 862-867.
Spittaels K., Van den Haute C., Van Dorpe J. et al. Glycogen synthase kinase-3beta phosphorylates protein tau and rescues the axonopathy in the central nervous system of human four-repeat tau transgenic mice // J. Biol. Chem. 2000. Vol. 275. P. 41340-41349.
Sprecher C.A., Grant F.J., Grimm G. et al. Molecular cloning of the cDNA for a human amyloid precursor protein homolog: evidence for a multigene family // Biochemistry (Mosc.). 1993. Vol. 32. P. 4481-4486.
Stanton L.R., Coetzee R.H. Down’s syndrome and dementia // Adv. Psychiatr. Treat. 2004. Vol. 10. P. 50-58.
SteinerH., FluhrerR., Haass C. Intramembrane proteolysis by gamma-secretase // J. Biol. Chem. 2008. Vol. 283. P. 29627-29631.
Stone J.R., Okonkwo D.O., Singleton R.H. et al. Caspase-3-mediated cleavage of amyloid precursor protein and formation of amyloid Beta peptide in traumatic axonal injury // J. Neurotrauma. 2002. Vol. 19. P. 601-614.
Takahashi S., Saito T., Hisanaga S. et al. Tau phosphorylation by cyclin-dependent kinase 5/p39 during brain development reduces its affinity for microtubules // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278. P. 10506-10515.
Talmard C., Leuma Yona R., Faller P. Mechanism of zinc(H)-promoted amyloid formation: Zinc(II) binding facilitates the transition from the partially alpha-helical conformer to aggregates of amyloid beta pro- tein(1-28) // J. Biol. Inorg. Chem. JBIC Publ. Soc. Biol. Inorg. Chem. 2009. Vol. 14. P. 449-455.
Tanaka S., Shiojiri S., Takahashi Y. et al. Tissue-specific expression of three types of beta-protein precursor mRNA: enhancement of protease inhibitor-harboring types in Alzheimer’s disease brain // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1989. Vol. 165. P. 1406-1414.
Tarr P.E., Roncarati R., Pelicci G. et al. Tyrosine phosphorylation of the beta-amyloid precursor protein cytoplasmic tail promotes interaction with Shc // J. Biol. Chem. 2002. Vol. 277. P. 16798-16804.
Tenidis K., Waldner M., Bernhagen J. et al. Identification of a penta- and hexapeptide of islet amyloid polypeptide (IAPP) with amyloidogenic and cytotoxic properties // J. Mol. Biol. 2000. Vol. 295. P. 1055-1071.
Terkeltaub R.A. Inorganic pyrophosphate generation and disposition in pathophysiology // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2001. Vol. 281. P. C1-C11.
Thal D.R., Glas A., Schneider W. et al. Differential pattern of beta-amyloid, amyloid precursor protein and apolipoprotein E expression in cortical senile plaques // Acta. Neuropathol. (Berl.). 1997. Vol. 94. P. 255-265.
Thirumalai D., Klimov D.K., Dima R.I. Emerging ideas on the molecular basis of protein and peptide aggregation // Curr. Opin. Struct. Biol. 2003. Vol. 13. P. 146-159.
Tsemekhman K., Goldschmidt L., Eisenberg D. et al. Cooperative hydrogen bonding in amyloid formation // Protein Sci. Publ. Protein Soc. 2007. Vol. 16. P. 761-764.
Turner P.R., O’Connor K., Tate W.P. et al. Roles of amyloid precursor protein and its fragments in regulating neural activity, plasticity and memory // Prog. Neurobiol. 2003. Vol. 70. P. 1-32.
Turner P.R., Bourne K., Garama D. et al. Production, purification and functional validation of human secreted amyloid precursor proteins for use as neuropharmacological reagents // J. Neurosci. Methods. 2007. Vol. 164. P. 68-74.
Uversky VN., Gillespie J.R., FinkA.L. Why are «natively unfolded» proteins unstructured under physiologic conditions? // Proteins. 2000. Vol. 41. P. 415-427.
Uylings H.B.M., de Brabander J.M. Neuronal changes in normal human aging and Alzheimer’s disease // Brain Cogn. 2002. Vol. 49. P. 268-276.
Vafai S.B., Stock J.B. Protein phosphatase 2A methylation: a link between elevated plasma homocysteine and Alzheimer’s Disease // FEBS Lett. 2002. Vol. 518. P. 1-4.
Van Nostrand W.E., Cunningham D.D. Purification of protease nexin II from human fibroblasts // J. Biol. Chem. 1987. Vol. 262. P. 8508-8514.
Vigo-Pelfrey C., Lee D., Keim P. et al. Characterization of beta-amyloid peptide from human cerebrospinal fluid // J. Neurochem. 1993. Vol. 61. P. 1965-1968.
Von Bergen M., FriedhoffP., Biernat J. et al. Assembly of tau protein into Alzheimer paired helical filaments depends on a local sequence motif ((306)VQIVYK(311)) forming beta structure // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. Vol. 97. P. 5129-5134.
Von Bergen M., Barghorn S., Li L. et al. Mutations of tau protein in frontotemporal dementia promote aggregation of paired helical filaments by enhancing local beta-structure // J. Biol. Chem. 2001. Vol. 276. P. 48165-48174.
Vossel K.A., Zhang K., Brodbeck J. et al. Tau reduction prevents Abeta-induced defects in axonal transport // Science. 2010. Vol. 330. P 198.
Wakasugi K., Schimmel P. Highly differentiated motifs responsible for two cytokine activities of a split human tRNA synthetase // J. Biol. Chem. 1999a. Vol. 274. P. 23155-23159.
Wakasugi K., Schimmel P. Two distinct cytokines released from a human aminoacyl-tRNA synthetase // Science. 1999b. Vol. 284. P 147-151.
Wall J.S., Richey T., Stuckey A. et al. In vivo molecular imaging of peripheral amyloidosis using heparinbinding peptides // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011. Vol. 108. P E586-594.
Wallace W., Ahlers S.T., Gotlib J. et al. Amyloid precursor protein in the cerebral cortex is rapidly and persistently induced by loss of subcortical innervation // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. Vol. 90. P 8712-8716.
Walter J., Capell A., Hung A.Y. et al. Ectodomain phosphorylation of beta-amyloid precursor protein at two distinct cellular locations // J. Biol. Chem. 1997. Vol. 272. P. 1896-1903.
Wang J.Z., Grundke-Iqbal I., Iqbal K. Glycosylation of microtubule-associated protein tau: an abnormal posttranslational modification in Alzheimer’s disease // Nat. Med. 1996. Vol. 2. P. 871-875.
Wasco W., Bupp K., Magendantz M. et al. Identification of a mouse brain cDNA that encodes a protein related to the Alzheimer disease-associated amyloid beta protein precursor // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. Vol. 89. P 10758-10762.
Wasco W., Gurubhagavatula S., Paradis M.D. et al. Isolation and characterization of APLP2 encoding a homologue of the Alzheimer’s associated amyloid beta protein precursor // Nat. Genet. 1993. Vol. 5. P 95-100.
Wilkinson D. Drugs for treatment of Alzheimer’s disease // Int. J. Clin. Pract. 2001. Vol. 55. P 129-134.
Williams K., Pye V., Saunders A. et al. Apolipoprotein E uptake and low-density lipoprotein receptor-related protein expression by the NTera2/D1 cell line: a cell culture model of relevance for late-onset Alzheimer’s disease // Neurobiol. Dis. 1997. Vol. 4. P 58-67.
Wilquet V., De Strooper B. Amyloid-beta precursor protein processing in neurodegeneration // Curr. Opin. Neurobiol. 2004. Vol. 14. P 582-588.
Wilson D.M., Binder L.I. Free fatty acids stimulate the polymerization of tau and amyloid beta peptides. In vitro evidence for a common effector of pathogenesis in Alzheimer’s disease // Am. J. Pathol. 1997. Vol. 150. P 2181-2195.
Wimo A., Jonsson L., Winblad B. An estimate of the worldwide prevalence and direct costs of dementia in 2003 // Dement. Geriatr. Cogn. Disord. 2006. Vol. 21. P 175-181.
Yanagisawa K., Ihara Y., Miyatake T. Secretory pathway of beta/A4 amyloid protein precursor in familial Alzheimer’s disease with Val717 to Ile mutation // Neurosci. Lett. 1992. Vol. 144. P 43-45.
Zitvogel L., Kepp O., Kroemer G. Decoding cell death signals in inflammation and immunity // Cell. 2010. Vol. 140. P 798-804.
Еще по теме Заключение:
- Заключение
- ЗАКЛЮЧЕНИЕ
- Заключение
- ЗАКЛЮЧЕНИЕ
- ЗАКЛЮЧЕНИЕ
- Заключение: от понимания к действию
- ЗАКЛЮЧЕНИЕ
- Параграф седьмой. О заключениях по двигательным действиям [мозга] и по тому, что с ними сходно, как [например], сон и бодрствование
- Параграф тринадцатый. Заключения по состоянию частей тела, которые являются как бы ветвями мозга, каковы, например, глаза, язык, лицо, проходы язычка2, миндалины, шея и нервы
- Параграф четырнадцатый. Заключения по соучастию органов, с которыми соучаствует мозг и к которым он близок
- Параграф десятый. Способы заключения о состоянии желудка
- Заключение
- Заключение
- Заключение
- 3.5. Заключение
- ЗАКЛЮЧЕНИЕ
- Патоморфологическое заключение